Satureja montana

Herkunft: Wie Saturejae herba aus Kulturen in Deutschland und Osteuropa, mit Schwerpunkt in den mediterranen Gebieten, da die Pflanze etwas mehr thermophil ist.

Gewinnung: s. Saturejae hortensis herba.

Pharmakognosie & Inhaltsstoffe [-]

Ganzdroge: Stengel lang und biegsam oder kurz und fest, stark beblättert und behaart, mit kurzen Internodien. Blätter 2,5 cm lang, 0,5 cm breit, länger als die Internodien, gegenständig, grün, glänzend, lineal-lanzettlich, stumpf oder spitz, Blattspreite kahl, Blattrand bewimpert. Blüten zu kleinen, kurz gestielten, ebenstraußartigen Knäueln vereinigt, am oberen Stengelteil in langen einseitswendigen, mehr oder weniger dichten Trauben. Jeweils 2 gegenständige, am Rande bewimperte Tragblätter. Kelch röhrig, mit Deckhaaren und Drüsenhaaren, in 5 spitzen Zähnen endend. Blütenkrone weiß, rosa oder violett, länger als der Kelch mit gerader Röhre und zweilippig. 4 Staubblätter. Nüßchen braun [74].

Mikroskopisches Bild: Im Blattquerschnitt Epidermis mit starker Cuticula, Spaltöffnungen und einzelligen, kurzen, konischen oder mehrzelligen, an den Wänden fein gestreiften, spitzen Deckhaaren. Außerdem Drüsenhaare, in die Epidermis eingesenkt, mit kurzem, einzelligem Fuß und mit mehrzelligem Drüsenköpfchen (Lamiaceendrüsenschuppen). Schwammparenchym ungleichmäßig, 2 Reihen Palisadenparenchym und Spiralgefäße. Leitbündel des Hauptnervs gebogen und abgeflacht [74].

Verwandte Artikel

- Hagers Enzyklopädie der Arzneistoffe und Drogen (1)

Satureja montana L. var. communis VIS.: a Blühender Sproß, b Blüte mit Kelch. Aus Lit. [21]

Pulverdroge: Blaßgrünes Pulver, Blattstücke mit leicht welligen Epidermiszellen und diacytischen Spaltöffnungen. Darauf die verschiedenen Haartypen (s. Mikroskopisches Bild der Schnittdroge). Zellen des Palisadenparenchyms und Spiralgefäße. Außerdem wenige lange, mehrzellige, dünnwandige Deckhaare der Blüten; Pollen mit warziger Exine. Wellige, stark sklerenchymatische und stark getüpfelte Zellen des Endocarps; Korkfragmente der Stengel[74].

Verfälschungen/Verwechslungen: Wegen der Ähnlichkeit zu Satureja hortensis mit diesem zu verwechseln. Im Gegensatz zum Gartenbohnenkraut sind beim Winterbohnenkraut die Leitbündel in den Blattnerven von verdickten Fasern begleitet, die Cuticula ist dicker als bei Saturejahortensis, ebenso wie die Wände der spitz-kegelförmigen Haare und der Eckzahnhaare des Blattrandes. Drüsenschuppen sind bei Saturejamontana zahlreicher und stehen dichter als bei Saturejahortensis, für alle Deckhaare dagegen gilt das Umgekehrte. Auch an den Stengelhaaren unterscheiden sich die beiden Bohnenkrautarten wesentlich: Dem Winterbohnenkraut fehlen die charakteristischen abwärts gerichteten Haare von Saturejahortensis. Der Stengel von Saturejamontana trägt nur in der Nähe der Sproßspitze wenige, einzellreihige, sehr derbwandige Haare mit verlängerter, stark zugespitzter Endzelle und warziger Cuticula [42].

Inhaltsstoffe: Ätherisches Öl. 0,8 bis 1,6 % ätherisches Öl mit Carvacrol als Hauptkomponente (40 bis 60 %), begleitet von 10 bis 20 % p-Cymol und 15 bis 20 % γ-Terpinen. Der Ölgehalt schwankt je nach Erntedatum zwischen diesen Grenzen und ist kurz vor der Blütezeit am höchsten. Zum selben Zeitpunkt weist auch der Carvacrolgehalt seinen höchsten Wert auf, der nach der Blütezeit bis zum Blattfall auf 35 % abfällt [44]. Weitere Komponenten sind Borneol, Bornylacetat, Camphen, Campher, Δ3-Caren, Δ4-Caren, Carvon, Caryophyllen, 1,8-Cineol, Geraniol, Limonen, Linalool, Linalylacetat, Myrcen, Ocimen, α-Phellandren, α-Pinen, β-Pinen, Terpinen-4-ol, α-Terpineol, Thymol [60], [67], [70]. Ölzusammensetzung im einzelnen s. Saturejae montanae aetheroleum. Da die Droge vorwiegend aus Kulturen stammt, ist nicht davon auszugehen, daß Pflanzen der anderen Chemotypen (Thymoltyp, Linalooltyp) in den Handel kommen. Lamiaceengerbstoffe und Phenolcarbonsäuren. Hydroxyzimtsäurederivate 3,4 %, der Anteil an Rosmarinsäure macht 1,2 % aus [49]. Weitere Inhaltsstoffe. Ein Alkangemisch (C₂₇ bis C₃₅), verschiedene C₁₈-Fettsäuren, Ursolsäure, Oleanolsäure, α- und β-Amyrin, β-Sitosterol und Polyterpene (C₅₅, C₆₀, C₆₅) [75].

Identitaet: Makroskopisches Bild s. unter Ganzdroge und Mikroskopisches Bild s. unter Schnittdroge [74].

Reinheit: Fremde Verunreinigungen: ≤ 2,0 % [74]. Trocknungsverlust bei 100 bis 105 °C: ≤ 13,0 % [74]. Asche: ≤ 7,0 % [74]. DC nach PF X: a) Prüflsg.: 0,1 mL des während der quant. Best. gewonnenen Öls in 10 mL EtOH 90 %; b) Referenzlösungen: Thymol und Carvacrol, je 1 % in EtOH 90 %; c) Sorptionsmittel: Kieselgel G; d) FM: Isopropylether – Tol. (10 + 90); e) Detektion: Besprühen mit Vanillin-Schwefelsäure-Reagenz und Erhitzen der Platte bei 100 bis 105 °C; f) Auswertung: Tageslicht; bei Rf 0,5 sind im Chromatogramm der Prüflösung 2 Banden zu sehen, eine rosafarbene, die dem Thymol, und eine violette, die dem Carvacrol in den Referenzlösungen entspricht. Außerdem 3 blauviolette Banden unterhalb dieser Banden und eine blauviolette Bande an der Fließmittelfront. Die DC kann auch als Identitätsprüfung herangezogen werden.

Gehalt: Ätherisches Öl: ≥ 0,7 % [74].

Gehaltsbestimmung: Volumetrische Best. des Gesamtgehaltes an ätherischem Öl durch Wasserdampfdestillation in einer Rundlaufapparatur nach PF X. Einwaage: 50 g, Destillationszeit: 3 h.

Lagerung, Stabilität, Verwendung, u. a.

Lagerung: Unter Ausschluß von Licht und Feuchtigkeit [74].

Sonstige Verwendungen: Als Gewürz wie Bohnenkraut, s. Saturejae herba.

Pharmakologie [-]

Wirkungen: Antimikrobielle Wirkung. Im Rahmen eines Screenings verschiedener Arzneipflanzen wurde in einem Agarverdünnungstest die Hemmwirkung eines Chloroformextraktes und eines Methanolextraktes der Droge aufStaphylococcus aureus, Candida albicans, Mycobacterium phlei und Klebsiella pneumoniae geprüft. Die MHK-Werte (g getrocknete Droge/L Kulturmedium) betrugen für den Chloroformextrakt 17,5 bei den ersten 3 Keimen und für den Methanolextrakt 14,7 bei allen 4 Keimen [76]. Diuretische Wirkung. An weibl. Wistarratten (n = 5) wurde die diuretische Wirkung der Droge (1,3 % ätherisches Öl mit 57 % Carvacrol, 1,4 % Flavonoide, 14 % Gerbstoffe) in einem 1-Tag-Versuch und einem 3-Tage-Versuch mit 2 verschiedenen Zubereitungen, p. o. appl., geprüft. Gabe von 5 mL/100 g KG eines Infuses (≙ 0,5 g Droge) und eines Ethanolextraktes (≙ 0,5 g Droge, in Wasser appl.) wirkten diuresehemmend und reduzierten das Urinvolumen nicht signifikant um 20 % bzw. 50 % (2,5 h) und um 23 % bzw. 14 % gegenüber einer Kontrollgruppe (nur Wasser). Im 3-Tage-Versuch mit dem Infus war nach 24 h kein erhöhtes Urinvolumen zu beobachten, nach 48 h jedoch eine signifikante Erhöhung auf 125 % (p < 0,05) und nach 72 h eine ebenfalls signifikante Erhöhung auf 133 % (p < 0,01). Zum Vergleich erhöhten 0,2 mg/kg KG einer Komb. aus Amilorid und Hydrochlorothiazid die Urinmenge signifikant (p < 0,001) auf 152 % (24 h), auf 174 % (48 h) und auf 169 % (72 h). Dieser zweiphasige Effekt wird als das Ergebnis einer zunächst vasodilatorischen Wirkung des ätherischen Öls und der Flavonoide interpretiert [73]. Diuretische Wirkung des ätherischen Öls s. Saturejae-montanae-aetheroleum. Entzündungshemmende Wirkung. Im Rahmen eines Screenings wurde die antiödematöse Wirkung am durch Carrageenin induzierten Rattenpfotenödem getestet (Beobachtungszeit 5 h). Die p. o. Gabe von 11 mg/kg KG Droge eine Stunde vor der Ödeminduzierung hatte einen ödemverstärkenden Effekt und erhöhte das Ausmaß des Ödems nicht signifikant um 26 %. Im Vergleich dazu hemmten 5 mg/kg KG Indometacin das Ödem signifikant um 45 % (p < 0,01) [77].

Dosierung & Art der Anwendung

Wie Bohnenkraut, s. Saturejae herba.

Volkstümliche Anwendungen &

andere Anwendungsgebiete

Verwendung wie Bohnenkraut, s. Saturejae herba.

Literatur [-]

1. Melchior H (Hrsg.) (1964) A. Engler's Syllabus der Pflanzenfamilien, 12. Aufl., Gebr. Bornträger, Berlin, Bd. II, S. 442

2. Wunderlich R (1967) Oesterr Bot Z 114:383–483

3. Sanders RW, Cantino PD (1984) Taxon 33:64–72

4. Cantino PD, Sanders RW (1986) Syst Bot 11:163–185

5. Cantino PD, Harley RM, Wagstaff SJ (1992) Genera of Labiatae: Status and Classification. In: Harley RM, Reynolds T (Hrsg.) Advances in Labiate Science, Royal Botanic Gardens, Kew, S. 511–522

6. FEu, Bd. 3, S. 163–165

7. Werker E, Ravid U, Putievsky E (1985) Isr J Bot 34:31–45

8. Bianchi A, Albasini A, Melegari M, Pecorari P, Vampa G, Rinaldi M (1986) Atti Soc Nat Mat Modena 117:49–64

9. Adzet T, Passet J (1972) Riv Ital 54:482–486

10. Hanlidou E, Kokkini S, Bosabalidis AM, Bessière JM (1991) Plant Syst Evol 177:17–26

11. Koiiman P (1972) Acta Bot Neerl 21:417–427

12. Zoz IG, Litvinenko VI (1979) Bot Zurn (Moscow Leningrad) 64:989–997, zit. nach Lit. [4]

13. Bianco A, Lamesi S, Passacantilli P (1984) Phytochemistry 23:121–123

14. Litvinenko VI, Popova TP, Simonjan AV, Zoz IG, Sokolov VS (1975) Planta Med 27:372–380 [PubMed]

15. Brieskorn CH, Eberhardt KH, Briner M (1953) Arch Pharm 286:501–506

16. Susplugas J, Privat G, Pellecuer J, Llopis J (1969) Trav Soc Pharm Montpellier 29:129–132

17. Escudero J, Lópes JC, Rabanal RM, Valverde S (1985) J Nat Prod 48:128–131

18. Tomás-Barberán FA, Husain SZ, Gil MI (1988) Biochem Syst Ecol 16:43–46

19. Wollenweber E, Valant-Vetschera KM (1991) Fitoterapia 62:462

20. Schultze-Motel J (Hrsg.) (1986) Rudolf Mansfeld, Verzeichnis landwirtschaftlicher und gärtnerischer Kulturpflanzen, 2. Aufl., Springer-Verlag, Berlin Heidelberg New York, Bd. III, S. 1163–1165

21. Hag, Bd. VI, S. 295–299

22. Maffei M (1994) Biochem Syst Ecol 22:711–728

23. Marin PD, Sajdl V, Kapor S, Tatic B, Petkovic B (1991) Phytochemistry 30:2979–2982

24. GHo, Bd. VII, S. 160–171

25. Furia TE, Bellanca N (Hrsg.) (1975) Fenaroli's Handbook of Flavor Ingredients, 2. Aufl., CRC Press, Cleveland (Ohio), Bd. 1, S. 462–464

26. Lawrence BM (1979) Perfum Flav 3:57–58

27. Lawrence BM (1981) Perfum Flav 6:76–77

28. Lawrence BM (1988) Perfum Flav 13:44–46

29. Lawrence BM (1992) Perfum Flav 17:50–53

30. Krotova GI, Goryaev MI, Dembitskii AD, Tavberidze AI (1979) Maslo-Zhir Prom 36:29–31, zit. nach CA (1972) 72:136287t

31. Chialva F, Gabri G, Liddle PAP, Ulian F (1982) J HRC & CC 5:182–189

32. Rhyu HY (1979) J Food Sci 44:1373–1378

33. Velasco Negueruela A, Perez Alonso MJ (1983) Anal Jard Bot Madrid 40:107–118

34. Deans SG, Svoboda KP (1989) J Hort Sci 64:205–210

35. Shipochliev T (1968) Vet Med Nauki 5:63–69, zit. nach Lit. [37]

36. Shipochliev T (1968) Vet Med Nauki 5:87–95, zit. nach Lit. [37]

37. Opdyke DLJ (1976) Food Cosmet Toxicol 14:859–860

38. Zani F, Massimo G, Benvenuti S, Bianchi A, Albasini A, Melegari M, Vampa G, Bellotti A, Mazza P (1991) Planta Med 57:237–241 [PubMed]

39. De Vincenzi M, Maialetti F, Dessi MR (1994) Fitoterapia 65:49–53

40. EB 6

41. Dachler M, Pelzmann H (1989) Heil- und Gewürzpflanzen, Österreichischer Agrarverlag, Wien

42. Staesche K (1970) Gewürze. In: Schormüller J (Hrsg.) Handbuch der Lebensmittelchemie, Alkaloidhaltige Genußmittel, Gewürze, Kochsalz, Springer-Verlag, Berlin Heidelberg New York, Bd. VI, S. 477–479

43. Hérisset A, Jolivet J, Zoll A, Chaumont JP (1974) Plant Méd Phytothér 8:287–294

44. Thieme H, Nguyen thi Tam (1972) Pharmazie 27:324–331

45. Deans SG, Svoboda K, Bartlett MC (1991) J Essent Oil Res 3:341–347

46. Vollmer H (1934) Arch Exp Pathol Pharmacol 176:207–216

47. Herrmann K (1962) Z Lebensm Unters Forsch 116:224–228

48. Herrmann K (1956) Pharmazie 11:433–448 [PubMed]

49. Lamaison JL, Petitjean-Freytet C, Carnat A (1990) Ann Pharm Fr 48:103–108 [PubMed]

50. Gerhardt U, Schröter A (1983) Fleischwirtschaft 63:1628–1630

51. Reschke A (1983) Z Lebensm Unters Forsch 176:116–119

52. Schulz JM, Herrmann K (1980) J Chromatogr 195:95–104

53. Nicholas HJ (1958) J Am Pharm Assoc 47:731–735

54. Gerhardt U, Blat P (1984) Fleischwirtschaft 64:484–486

55. Lamaison JL, Petitjean-Freytet C, Carnat AP, Carnat A (1988) Plant Méd Phytothér 22:231–234

56. Leclerc H (1966) Précis de Phytothérapie, 5. Aufl., Masson et Cie, Paris, S. 39

57. Jain SK, DeFilipps RA (1991) Medicinal Plants of India, Reference Publications, New Delhi, Bd. 1, S. 376

58. Moerman DE (1986) Medicinal Plants of Native America, The Regents of the Museum of Michigan, Michigan, Bd. 1, S. 446

59. Herrmann EC, Kucera JS (1967) Proc Soc Exp Biol Med 124:874–878 [PubMed]

60. Palic R, Silic C, Gasic MJ (1983) Acta Pharm Jugosl 33:227–231

61. Pellecuer J, Garnero J (1980) Paper No. 114, VIIIth International Congress of Essential Oils, Cannes, zit. nach Lit. [27]

62. San Martin R, Granger R, Adzet T, Passet J, Teulade-Arbousset MG (1973) Plant Méd Phytothér 7:95–103

63. Stancher B, Poldini L (1969) Giorn Bot Ital 103:65–77, zit. nach Lit. [26]

64. Bellomaria B, Valentini G (1985) Giorn Bot Ital 119:81–87, zit. nach Lit. [28]

65. Lokar LC, Maurich V, Poldini L (1983) Webbia 37:197–206

66. Stanic G, Petricic J, Blazevic N (1991) J Essent Oil Res 3:153–158

67. Thieme H, Nguyen thi Tam (1972) Pharmazie 27:255–265

68. Srepel B, Vitaic D, Besic J (1974) Acta Pharm Jugosl 24:167–171

69. Piccaglia R, Marotti M, Galletti GC (1991) J Essent Oil Res 3:147–152

70. Panizzi L, Flamini G, Cioni PL, Morelli I (1993) J Ethnopharmacol 38:167–170 [PubMed]

71. Roussel JL, Pellecuer J, Andary C (1973) Trav Soc Pharm Montpellier 33:587–592

72. Pellecuer J (1973/74) Bull Techn Gattefossé 68:77–86

73. Stanic G, Samarzija I (1993) Phytother Res 7:363–366

74. PF X

75. Tabacik C, Hubert M (1970) Phytochemistry 9:1129–1131

76. Recio MC, Rios JL, Villar A (1989) Phytother Res 3:77–80

77. Mascolo N, Autore G, Capasso F, Menghini A, Fasulo MP (1987) Phytother Res 1:28–31

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Datenstand

15.08.2010