Eberhard Scholz
O > Olea > Olea europaea L. > Oleae folium (Olivenblätter)
G Olea
D Olea europaea, flos hom. HPUS 88
D Oleae folium (Olivenblätter)
Folia Oleae; Folia Olivae; Oleae Folia
dt.:Ölbaumblätter, Olivenblätter; Olive leaves; Feuilles d'olivier; Foglie di olivo; Hojas de olivo; port.:Folhas de oliveira.
Die getrockneten Blätter.
Stammpflanzen: Olea europaea L.
Herkunft: Die Blätter stammen von den ebenfalls zur Olivengewinnung kultivierten Bäumen. Hauptlieferant ist Spanien, daneben auch die anderen europoäischen und nordafrikanischen Mittelmeerländer [42].
Gewinnung: Lufttrocknung der Blätter an einem schattigen Ort [42].
Ganzdroge: Aussehen. Olivenblätter sind lanzettlich, ganzrandig und beiderseits eingerollt. An der Spitze tragen sie einen kleinen Stachel. Die Oberseite ist hellgrün und schwach glänzend, die Unterseite ist silbrig-filzig. Die Handelsdroge ist etwa 6 cm lang und 1,5 cm breit [103].
Schnittdroge: Geschmack. Bitter und zusammenziehend. Geruch. Heuartig, aromatisch.
Mikroskopisches Bild: Querschnitt. Obere Epidermiszellen groß, fast quadratisch, mit stark verdickter Cuticula, Schuppenhaare (Schildhaare) sind selten, Spaltöffnungen fehlen. Mesophyll aus drei Reihen Palisadenparenchym, das Schwammparenchym schließt mit palisadenartig gestreckten Zellen gegen die untere Epidermis ab. Mit Ausnahme dieser Schicht wird das gesamte Mesophyll von faserförmigen, verzweigten, einzelnen oder in Bündeln von zwei bis vier auftretenden Sklereiden durchzogen. In den Mesophyllzellen, besonders aber in den Zellen des Palisadenparenchyms und des Blattstiels zahlreiche kurze Kristallnadeln, bei denen es sich mit großer Wahrscheinlichkeit um Mannitolkristalle handelt. Daneben kommen Oxalatkristalle vor. Untere Epidermiszellen kleiner als die oberen, mit dünner Cuticula. Spaltöffnungen mit stark cutinisierten Schließzellen. Zahlreiche Einsenkungen mit jeweils einem Schuppenhaar, bestehend aus einer Stielzelle und vielen dünnwandigen, schirmartig ausgebreiteten Zellen, deren Rand der Blattoberfläche anliegt [103].
Pulverdroge: Mikroskopisches Bild. Neben verzweigten Faserbruchstücken finden sich Fragmente der oberen Epidermis mit anhaftenden Fasern. Im Mesophyll und auch freiliegend zahlreiche Kristallnadeln. Viele abgerissene Schuppenhaare mit fehlender Basalzelle [103].
Verfälschungen/Verwechslungen: Olivenblätter werden nicht selten mit Oleanderblättern von Nerium oleander L. verwechselt, von denen sie jedoch durch ihre Fasern und Schuppenhaare sicher unterschieden werden können[103].
Inhaltsstoffe: Terpene. Die Droge enthält 6 bis 9 % Oleuropein [43] und mehrere Triterpensäuren, darunter 0,15 % Oleanolsäure, 0,2 % Maslinsäure (= Crataegolsäure), zwei Hydroxyoleanansäuremethylester [30], Erythrodiol (= Homoolestranol) [44] und den Triterpenkohlenwasserstoff Squalen [45]. Die Secoiridoidglykoside, 6-O-Oleuropeylsaccharose sowie die lipophilen Inhaltsstoffe der frischen Blätter (s. → Olea europaea hom. PF X) dürften auch in der schonend getrockneten Droge enthalten sein. Phenolische Verbindungen. Die getrockneten Blätter sollen die Chalkone Olivin und Olivin-4′-diglucosid und die Flavone Luteolin, Luteolin-7-O-glucosid sowie ein Luteolintetraglucosid enthalten [46]. Eine spätere Untersuchung frischer Blätter konnte das Vorkommen von Olivin jedoch nicht bestätigen [8]. Bestätigt wurde aber das Vorkommen von Luteolin-7-O-β-D-glucosid in der Droge, in der auch die bereits aus frischen Blättern bekannten Flavonglucoside Luteolin-4′-O-β-D-glucosid, Apigenin-7-O-β-D-glucosid sowie zusätzlich 5,7,4′-Trihydroxy-3′-methoxyflavon(= Chrysoeriol-)7-O-β-D-glucosid gefunden wurden [98]. Dihydroxyphenylethanol, Verbascosid sowie die Flavonoide und Flavonoidglykoside der frischen Blätter (s. → Olea europaea hom. PF X) dürften auch in der schonend getrockneten Droge enthalten sein. Sonstige Verbindungen. In getrockneten Blättern wurden 5 Alkaloide, darunter Cinchonin, Cinchonidin und Dihydrocinchonidin in einer Konzentration von insgesamt 20 ppm nachgewiesen [15]. Daneben enthält die Droge 0,02 % eines o-Dimethylbenzochinons mit einer isoprenoiden Seitenkette von 50 C-Atomen [29] sowie Cholin [47].
Identitaet: DC eines ethanolischen Extrakts s. → Olea europaea hom. PF X. Der Acetonextrakt färbt sich auf Zusatz von Eisen(III)chloridlsg. grün. Die Färbung beruht auf der Komplexbildung von Fe3+-Ionen mit den phenolischen o-Hydroxygruppen der Kaffeesäurederivate und der Flavonoide.
Gesetzliche Bestimmungen: Negativmonographie der Kommission E am BGA „Oleae folium (Olivenblätter)“ [54].
Wirkungen: Wirkung an Herz und Gefäßen. Die gefriergetrocknete wäßrige Abkochung frischer Olivenblätter (1 × 25 bis 50 mg/kg KG, i. v.) senkt bei narkotisierten normotonen Ratten den Blutdruck um 30 %. In der gleichen Studie hemmen 1,12 mg gefriergetrockneter Extrakt/mL die mittels Phenylephrin ausgelösten Spasmen der isolierten Rattenaorta um 50 %. Oleuropein wird als einer von mindestens zwei Wirkstoffen identifiziert [48]. In einer ähnlichen Studie senkt der wäßrige Extrakt der frischen Blätter nach einmaliger Gabe der hohen Dosis von 360 mg/kg KG den arteriellen Blutdruck von narkotisierten normotonen Ratten nach 5 min um 40 % bzw. nach 15 min um 25 % [49]. Das mit Ethanol-Wasser (1+1) aus den frischen Blättern im Verhältnis 95:5 hergestellte Mazerat senkt bei einmaliger peroraler Gabe von 40 mL/kg KG bei spontan hypertensiven Ratten den arteriellen Blutdruck während 5 h um durchschnittlich 10 % [50]. Der mit Ethanol-Wasser (3+7) aus getrockneten Blättern hergestellte Extrakt hemmt in einer Konzentration von 1 mg/mL die K+-stimulierte Kontraktion der isolierten Kaninchenaorta um 60 % [51]. Das aus getrockneten Blättern mit Glycerol-EtOH (1+1) im Verhältnis 1:20 hergestellte Mazerat (20 mg/kg KG, p. o.) hemmt bei narkotisierten Hunden die Sinusfunktion des Herzens. Diese Hemmung drückt sich aus in einer Verlängerung (+16 %) des Sinuscyclus, einer Verlängerung (+27 %) der sinoatrialen Überleitungszeit sowie einer Verlängerung (+31 %) der Refraktärzeit des Sinusknotens. Daneben kommt es zu einer Verminderung der Leitfähigkeit der langsamen intranodalen Fasern, gemessen als Verlängerung (+33 %) des A-H-Intervalls. Nach Dosiserhöhung auf 30 mg/kg KG werden auch die schnellen Fasern des Vorhofs und der Kammer gehemmt. Weiterhin werden das monophasische Aktionspotential um 10 bis 13 % sowie die ventrikulären effektiven Refraktionsperioden um 10 bis 18 % verlängert [52]. Die beobachteten Wirkungen werden mit der Hemmung sowohl des schnellen Na+- als auch des langsamen Ca2+-Einstroms und zusätzlich mit der Verminderung der K+-Leitfähigkeit der Myocardfasern erklärt. Als Wirkstoff werden Oleuropein sowie weitere, möglicherweise synergistisch wirkende Verbindungen diskutiert. Das oben beschriebene glyceroethanolische Mazerat aus getrockneten jungen Olivenzweigen (in einer Dosierung, die 100 bis 500 mg Droge/kg KG entspricht, p. o. mittels Magensonde) vermindert den arteriellen Blutdruck normotoner Ratten 60 min nach Applikation um durchschnittlich 20 % und erhöht gleichzeitig die Herzfrequenz um 18 %. Bei höherer Dosierung nimmt die hypotensive Wirkung ab. Oleuropein ist in diesem Versuch deutlich schwächer wirksam [105]. Das glyceroethanolische Mazerat der getrockneten Blätter (in einer Dosierung, die 25 mg Droge/kg KG entspricht, p. o.) schützt das Rattenherz vor einer aconitininduzierten Arrhythmie, wenn es 30 min vor der Aconitingabe verabreicht wird. Die zur Arrhythmieauslösung notwendige Aconitindosis liegt bei 25 μg/kg KG/min in der mit dem Blattextrakt behandelten Gruppe gegenüber 5,8 μg/kg KG/min in der Kontrollgruppe sowie 32 μg/kg KG/min in der mit Lidocain behandelten Positivkontrolle [105]. Am isolierten Kaninchenherzen erhöht das Blattmazerat den Coronardurchfluß um 32 % bzw. um 53 % in einer Dosierung, die 5 bzw. 10 mg Droge/mL entspricht und zeigt daneben schwache positiv inotrope sowie positiv chronotrope Wirkungen. Oleuropein (5 μg/mL) erhöht in diesem Versuch den Coronardurchfluß um 40 % und hat etwas stärkere positiv inotrope und chronotrope Wirkungen als der Blattextrakt. Nach Dosiserhöhung wirken sowohl das Blattmazerat (in einer Dosierung, die 100 mg Droge/mL entspricht) als auch Oleuropein (100 μg/mL) negativ inotrop und negativ chronotrop [105]. Oleuropein läßt nach i. v. Gabe von 10 bis 30 mg/kg KG den Blutdruck von Ratten unbeeinflußt, senkt jedoch den Blutdruck von narkotisierten normotonen Katzen während der ersten Stunde nach der i. v. Gabe von 30 mg/kg KG um durchschnittlich 36 %[53]. Bei wachen Hunden mit experimentell induziertem Hochdruck senkt Oleuropein (10 bis 30 mg/kg KG, i. v.) den systolischen Druck um 60 % und den diastolischen Druck um 70 %. Nach etwa 5 h normalisiert sich der Blutdruck wieder [53]. Am isolierten Kaninchenherzen steigert Oleuropein in einer Konzentration von 2 × 10–5 mol/L den Coronardurchfluß um 63 %. Höhere Konzentrationen schwächen die Wirkung ab [53]. Am wachen Kaninchen normalisiert Oleuropein (10 und 20 mg/kg KG, i. v.), wenn es 1 min nach Arrhythmieauslösung (BaCl2 2 mg/kg KG, i. v.) gegeben wird, über den Zeitraum von einer Stunde den Herzrhythmus. An Ratten verhindert prophylaktisch appliziertes Oleuropein (30 mg/kg KG, i. v.) bei 30 % der Tiere die Ausbildung einer CaCl2-induzierten Arrhythmie. Die mittels Adrenalin und Aconitin provozierten Arrhythmien bei Ratten sowie die mit Strophanthin induzierte Arrhythmie bei der Katze können durch die prophylaktische Oleuropeingabe (30 mg/kg KG, i. v.) nicht beeinflußt werden [53]. Wirkung auf die glatte Muskulatur. An isolierten Duodenum- und Jejunumsegmenten von Kaninchen und Meerschweinchen verhindert Oleuropein in einer Konzentration von 1 × 10–5 bis 4 × 10–4 mol/L die durch Acetylcholin, Nicotin und Histamin hervorgerufenen Kontraktionen. Bei Induktion mit Bariumchlorid und Serotonin ist die Hemmung geringer [53]. Hypoglykämische und antidiabetische Wirkung. Die p. o. Gabe von 0,5 g/kg KG einer gefriergetrockneten wäßrigen Abkochung aus frischen Olivenblättern (50 g/1000 mL) senkt den Blutglucosespiegel normoglykämischer Ratten während eines Zeitraums von 150 min in Abhängigkeit vom Oleuropeingehalt der Blätter. Die im Februar geernteten Blätter haben den höchsten Gehalt an Oleuropein und senken mit 40 % die Serumglucose auch am stärksten. Am gleichen Modell reduzieren 16 mg/kg KG bzw. 32 mg/kg KG Oleuropein über eine Zeitspanne von 150 min die Serumglucose um 17 % bzw. um 27 % [104]. Bei Ratten mit alloxaninduziertem Diabetes (120 mg/kg KG, i. p., 3 Tage) senkt Oleuropein (32 mg/kg KG, p. o.) den Blutglucosespiegel über einen Zeitraum von 150 min um 48 %. Die Ergebnisse deuten aus Sicht der Autoren auf die Verstärkung der glucoseinduzierten Insulinfreisetzung sowie auf die gesteigerte periphere Glucoseaufnahme als mögliche Wirkmechanismen [104]. Wirkung auf die Serumlipide. Das aus frischen Blättern mit Glycerol-Ethanol (1+1) im Verhältnis 1:20 hergestellte 3-Wochen-Mazerat (in einer Dosierung, die 250 mg Droge/kg KG/Tag entspricht, p. o.) erniedrigt nach 15 Tagen die Gesamtlipide des Serums bei Ratten mit diätetisch induzierter Hypercholesterolämie um 50 %. Das glyceroethanolische Mazerat der Blätter und der Zweige senkt in Dosen entsprechend 250 (500) mg Droge/kg KG p. o. das Serumcholesterol um 15 % (30 %). Oleuropein ist in diesem Versuch bei einer Dosierung von 0,2 mg/kg KG unwirksam, senkt das Serumcholesterol bei Gabe von 0,5 mg/kg KG jedoch um 46 % [106]. Sowohl die Mazerate der Blätter und Zweige (entsprechend 500 mg Droge/kg KG, p. o.), als auch Oleuropein (10 mg/kg KG, p. o.) senken das mittels Triton WR-1339 (= Tyloxapol, 100 mg/kg KG, i. p.) erhöhte Serumcholesterol nach 27 h um 20 bis 40 %. Darüber hinaus reduziert Oleuropein im gleichen Versuch nach 18 h und nach 27 h die Gesamtlipide um 45 % [106]. Wirkung auf Schilddrüsenhormone. An männlichen, erwachsenen Wistar-Ratten, KG 125-150 g, wurde der Effekt von p.o. 100, 250 und 500 μg/Tier eines gefriergetrockneten, wässrigen Extrakt aus frischen Blättern über 14 Tage, untersucht. Gegenüber der Kontrolle (destilliertes Wasser) sank der TSH-Spiegel in allen Dosisgruppen von 0,8 μlU/mL auf 0.2 μlU/mL (p<0,01), T3 stieg dosisabhängig von 1,2 auf 3,0 nmol/L (p<0,01 in den beiden höheren Dosisgruppen) und T4 stieg dosisabhängig von 0,9 auf 1,3 ng/dL (p>0,05). Die Autoren postulieren, dass die lipidsenkenden Wirkungen auf eine Erhöhung der peripheren T4/T3Konversion beruht [134][96] Molluscizide Wirkung. Oleuropein und Ligstrosid wirken auf die als Überträgerin der Schistosomiasiserreger fungierende Süßwasserschnecke Biomphalaria glabratus toxisch. Die nach 24 h ermittelte LD50 beträgt 250 ppm bzw. 100 ppm [96].
Zubereitungen aus Olivenblättern werden gegen hohen Blutdruck [107], [108], [109], Gicht, Atherosklerose und Rheumatismus [107], [108] sowie bei Diabetes [107] und gegen Fieber [108] verwendet. In der italienischen Volksmedizin werden sie als harntreibendes Mittel gegen hohen Blutdruck [57], [90], zur Fiebersenkung [58] sowie bei Gicht [59] angewendet. Auf den Kanarischen Inseln werden sie bei Diabetes und Bluthochdruck eingesetzt [60]. Ältere Zusammenstellungen von Kasuistiken betonen zwar die subjektiv empfundene Linderung einiger Symptome des Bluthochdrucks, eine Wirksamkeit von Olivenblättern bei diesen Anwendungsgebieten ist daraus jedoch nicht ableitbar [110]-[113]. Auch klinische Studien haben die Wirksamkeit der Blattextrakte von O. europaea bei Grenzwerthypertonien oder bei milden Hypertonieformen bisher nicht bewiesen [55]. Eine therapeutische Anwendung bei Hypertonie ist nicht vertretbar [54]. Einzelgabe: 7 bis 8 g Blätter als Infus auf 150 mL Wasser [55], 2 Teelöffel der getrockneten Blätter als Infus [56]. Teebereitung: 30 min lang ziehen lassen [55]. Mittlere Tagesdosis: 3 bis 4 Tassen über den Tag verteilt [55].
Toxikologische Daten:
LD-Werte. Bei i. p. Gabe eines nicht näher beschriebenen Blattextraktes beträgt die LD50 bei der Maus 1300 mg/kg KG [114]. Ebenfalls an Mäusen werden nach i. p. Gabe von Oleuropein bis zu einer Dosis von 1000 mg/kg KG während eines Beobachtungszeitraums von 7 Tagen keine toxischen Wirkungen festgestellt. Die LD50 ist somit nicht zu ermitteln [53].
1. Heg, Bd. V, Teil 3, S. 1.934–1.944
2. Johnson LAS (1957) Contrib N S Wales Nat Herb 2:395–418
3. Knoblauch E (1891) Oleaceae. In: Engler A, Prantl K (Hrsg.) Die natürlichen Pflanzenfamilien, W. Engelmann, Leipzig, Bd. IV, 2, S. 1–16
4. Camurati F, Rizzolo A, Fedeli E (1980) Riv Ital Sost Grasse 57:369–377
5. Bianchini JP, Gaydon EM, Rafaralahitsimba G, Waegell B, Zahra JP (1988) Phytochemistry 27:2.301–2.304
6. Gariboldi P, Jommi G, Verotta L (1986) Phytochemistry 25:865–869
7. Tsukamoto H, Hisada S, Nishibe S (1985) Chem Pharm Bull 33:396–399
8. Harborne JB, Green PS (1980) Bot J Linn Soc 81:155–167
9. Nishibe S, Tsukamoto H, Agata J, Hisada S, Shima K, Takemoto T (1981) Shoyakugaku Zasshi 35:251–254
10. Tsukamoto H, Hisada S, Nishibe S, Roux DG, Rourke JP (1984) Phytochemistry 23:699–700
11. Tsukamoto H, Hisada S, Nishibe S (1984) Chem Pharm Bull 32:2.730–2.735 [PubMed]
12. Tsukamoto H, Hisada S, Nishibe S (1985) Chem Pharm Bull 33:1.232–1.241
13. Tsukamoto H, Hisada S, Nishibe S, Roux DG (1984) Phytochemistry 23:2.839–2.841
14. Hgn, Bd. 5, S. 231–247
15. Schneider G, Kleinert W (1972) Planta Med 22:109–116 [PubMed]
16. Hgn, Bd. 9, S. 172
17. Franke W (1989) Nutzpflanzenkunde, 4. Aufl., Thieme, Stuttgart, S. 153–156
18. Morettini A (1962) Der Ölbaum. In: Bally W, Ferwerdea JD, Morettini A (Hrsg.) Tropische und subtropische Weltwirtschaftspflanzen, Teil 2: Ölpflanzen, 2. Aufl., F. Enke, Stuttgart, S. 20–78
19. Loussert R, Brousse G (1978) L'olivier, G. P. Maisonneuve & Larose, Paris, S. 124–125
20. Panizzi L, Scarpati ML, Oriente G (1960) Gazz Chim Ital 90:1.449–1.485
21. Inouye H, Yoshida T, Tobita S, Tanaka K, Nishioka T (1974) Tetrahedron 30:201–209
22. Ragazzi E, Veronese G, Guiotto A (1973) Ann Chim 63:13–20
23. Panizzi L, Scarpati ML, Trogolo C (1965) Gazz Chim Ital 95:1.279–1.292
24. Fritsch R (1986) Oleaceae. In: Schultze-Motel J (Hrsg.) Rudolf Mansfeld, Verzeichnis landwirtschaftlicher und gärtnerischer Kulturpflanzen (ohne Zierpflanzen), Springer, Berlin, Heidelberg, New York, S. 1.062–1.063
25. Mechoulam R, Danieli N, Mazur Y (1962) Tetrahedron Lett: 709–712
26. Scarpati ML, Trogolo C (1966) Tetrahedron Lett: 5.673–5.674
27. Caputo R, Mangoni L, Monaco L, Previtera L (1974) Phytochemistry 13:1.551–1.552
28. Camurati F, Rizzolo A, Fedeli E (1980) Riv Ital Sost Grasse 57:369–377
29. Kofler M, Langemann A, Rüegg R, Chopard-dit-Jean LH, Rayroud A, Isler O (1959) Helv Chim Acta 42:1.283–1.292
30. Caputo R, Mangoni L, Monaco P, Previtera L (1974) Phytochemistry 13:2.825–2.827
31. Ragazzi E, Veronese G (1967) Ann Chim 57:1.386–1.397
32. Vazquez Roncero A, Constante EG, Duran MR (1974) Grasas Aceites 25:269–279
33. Camurati F, Rizzolo A, Fedeli E (1981) Riv Ital Sost Grasse 58:541–547
34. Amiot MJ, Fleuriet A, Macheix JJ (1986) J Agric Food Chem 34:823–826
35. Vanzetti BL (1929) Monatshefte Chem 52:163–168
36. Chiba M, Okabe K, Hisada S, Shima K, Takemoto T, Nishibe S (1979) Chem Pharm Bull 27:2.868–2.873
37. Chopin J, Dellamonica G (1988) C-glycosyl-flavonoids. In: Harborne JB (Hrsg.) The Flavonoids, Chapman&Hall, London, S. 66
38. Luh BS, Mahecha G (1971) Chung Kuo Nung Yeh Hua Hsueh Hui Chih 1–24, zit. nach CA 77:60298
39. Harborne JB, Grayer RJ (1988) The anthocyanins. In: Harborne JB (Hrsg.) The Flavonoids, Chapman& Hall, London, S. 4
40. Gil-Serrano A, Mateos-Matos MI, Tejero-Mateo MP (1986) Phytochemistry 25:2.653–2.654
41. Amin ES, Bassiouny AR (1979) Phytochemistry 18:344
42. Firma Müggenburg/Aloeslohe (1992) Mitteilung vom 10.04.1992
43. LeTutour B, Guedon D (1992) Phytochemistry 31:1.173–1.178
44. Huneck S, Lehn JM (1963) Bull Soc Chim Fr: 321–322
45. Vazquez Roncero A, Janer del Valle ML (1962) Grasas Aceites 13:242
46. Bockova H, Holubek J, Cekan Z (1964) Coll Czech Chem Commun 29:1.484–1.491
47. Samuelsson GL (1951) Farm Revy 50:229, zit. nach Samuelsson GL (1952) Dtsch Apoth Ztg 92:294
48. Zarzuelo A, Duarte J, Jimenez J, Gonzalez M, Utrilla MP (1991) Planta Med 57:417–419 [PubMed]
49. Laserre B, Kaiser R, Huu Chanh P (1983) Naturwissenschaften 70:95–96 [PubMed]
50. Ribeiro RA, Melo MMRF, Barros F, Gomes C, Trolin G (1986) J Ethnopharmacol 15:261–269 [PubMed]
51. Rauwald HW, Brehm O (1991) Planta Med 57 (Suppl):A59
52. Occhiuto F, Circosta C, Gregorio A (1990) Phytother Res 4:140–143
53. Petkov V, Manolov P (1972) Arzneim Forsch 22:1.476–1.486 [PubMed]
54. BAz Nr. 11 vom 17.01.1991
55. Hänsel R (1991) Phytopharmaka, 2. Aufl., Springer, Berlin Heidelberg New York, S. 50
56. Karl J (1983) Phytotherapie, 4. Aufl., Verlag Tibor Marczell, München, S. 244
57. DeFeo V, Aquino R, Menghini A, Ramundo E, Senatore F (1992) J Ethnopharmacol 36:113–125 [PubMed]
58. Capasso F, De Simone F, Senatore F (1982) J Ethnopharmacol 6:243–250 [PubMed]
59. Leporatti ML, Posocco E, Pavesi A (1985) J Ethnopharmacol 14:65–68 [PubMed]
60. Darias V, Bravo L, Barquin E, Martin Herrera D, Fraile C (1986) J Ethnopharmacol 15:169–193 [PubMed]
61. Kuwajima H, Uemura T, Takaishi K, Inoue K, Inouye H (1988) Phytochemistry 27:1.757–1.759
62. Mussini P, Orsini F, Pelizzoni F (1975) Phytochemistry 14:1.135
63. Vazquez Roncero A, Janer del Valle ML (1967) Grasas Aceites 18:222–230, zit. nach CA 68:19529
64. Movsumov IS, Aliev AM, Tagieva ZD (1987) Farmatsiya (Moskau) 36:32–34, zit. nach CA 106:207221
65. Kriventsov VJ, Dolganenko LG, Dranik LJ (1974) Chem Nat Comp 10:101
66. Kom, Bd. 3, S. 2.597–2.599
67. Codex Alimentarius Commission, Amendment (1981) Codex Stan 33, zit. nach Lit. [66]
68. Pestaña A, Munoz E (1982) Nature 298:608 [PubMed]
69. Vazquez Roncero A (1963) Grasas Aceites 14:262–270
70. Padley FB, Gunstone FD, Harwood JL (1986) Occurence and characteristics of oils and fats. In: Gunstone FD, Harwood JL, Padley FB (Hrsg.) The Lipid Handbook, Chapman&Hall, New York, S. 49–112
71. Itoh T, Yoshida K, Yatsu T, Tamura T, Matsumoto T, Spencer GF (1981) J Am Oil Chem Soc 58:545–550
72. Fedeli E (1977) Progr Chem Fats Other Lipids 15:57–74 [PubMed]
73. Minguez-Mosquera MI, Gandul-Rojas B, Gallardo-Guerrero ML (1992) J Agric Food Chem 40:60–63
74. Diaz Blasco R, Pizzorno LN (1957) An Direc Nacl Quim (Buenos Aires) 10:13–16, zit. nach CA 53:17539
75. Ragazzi E, Veronese R (1973) Riv Ital Sost Grasse 50:443
76. Vazquez Roncero A, Janer del Valle C, Janer del Valle ML (1976) Grasas Aceites 27:185
77. Kom, Bd. 1, S. 113–115
78. Pachaly P (1988) Dtsch Apoth Ztg 128:1.689–1.693
79. Fiebig HJ (1985) Fette Seifen Anstrichm 87:53, zit. nach Lit. [77]
80. Tsimidou M, Macrae R (1987) Food Chem 25:251–258
81. Kom, Bd. 1, S. 139–143
82. Metcalfe LD, Schmitz AA (1961) Anal Chem 33:363, zit. nach Lit. [81]
83. Comm Tec Govern (1971) Norme italiane per il controllo dei grassi e dei derivati, Staz Sper ed Oli e Grassi, Milano, Metodo Ba-IV-40-1971, zit. nach Lit. [72]
84. Trevisan M, Krogh V, Freudenheim J, Blake A, Muti P, Panico S, Farinaro E, Mancini M, Menotti A, Ricci G (1990) J Am Med Assoc 263:688–692
85. Sirtori CR, Tremoli E, Gatti E, Montanari G, Sirtori M, Colli S, Gianfranceschi G, Maderna P, Zucchi Dentone C, Testolin G (1986) Am J Clin Nutr 44:635–642 [PubMed]
86. Baggio G, Pagnan A, Muraca M, Martini S, Opportuno A, Bonanome A, Ambrosio GB, Ferrari S, Guarini P, Piccolo D, Manzato E, Corrocher R, Crepaldi G (1988) Am J Clin Nutr 47:960–964 [PubMed]
87. BAz Nr. 178 vom 21.09.1991
88. Hag, Bd. VII, S. 199
89. Pardun H (1969) Analyse der Fette und Fettbegleitstoffe. In: Schormüller J (Hrsg.) Handbuch der Lebensmittelchemie, Bd. IV: Fette und Lipoide, Springer, Berlin Heidelberg New York, S. 1.014
90. Poletti A, Schilcher H, Müller A (1982) Heilkräftige Pflanzen, Walter Hädecke Verlag, Weil der Stadt, S. 187
91. Holzner H, Kriehuber E, Wenger R (1960) Virch Arch Pathol Anat 333:210–218
92. DAB 10
93. Steinegger E, Steiger KE (1959) Pharm Acta Helv 34:521–542 [PubMed]
94. Bianchi G, Murelli C, Vlahov G (1992) Phytochemistry 31:3.503–3.506
95. Amiot MJ, Fleuriet A, Macheix JJ (1989) Phytochemistry 28:67–69
96. Kubo J, Matsumoto A (1984) J Agric Food Chem 32:687–688
97. Vlahov G (1992) J Sci Food Agric 58:157–159
98. Tomas F, Ferreres F (1980) An Quim Ser C (Madrid) 76:292–293
99. Heimler D, Pieroni A, Tattini M, Cimato A (1992) Chromatographia 33:369–373
100. Brenes-Balbuena M, Garcia-Garcia P, Garrido-Fernandez A (1992) J Agric Food Chem 40:1.192–1.196
101. Cantarelli C (1961) Riv Ital Sost Grasse 38:69, zit. nach Lit. [102]
102. Fernandez Diez MJ (1970) The Olive. In: Hulme AC (Hrsg.) The Biochemistry of Fruits and their Products, Academic Press, London, S. 255–279
103. Schneider G, Löbenberg L (1972) Planta Med 22:117–121 [PubMed]
104. Gonzalez M, Zarzuelo A, Gomez MJ, Utrilla MP, Jimenez J, Osuna I (1992) Planta Med 58:513–515 [PubMed]
105. Circosta C, Occhiuto F, Gregorio A, Toigo S, de Pasquale A (1990) Plant Méd Phytothér 24:264–277
106. De Pasquale R, Monforte MT, Trozzi A, Raccuia A, Tommasini S, Ragusa S (1991) Plant Méd Phytothér 25:134–140
107. Valnet J (1983) Phytothérapie, 5. Aufl., Maloine, Paris, S. 587–588
108. Cecchini T (1990) Enciclopedia de las hierbas y de las plantas medicinales, Editorial De Vecchi S. A., S. 348–351
109. Font Quer P (1962) Plantas Medicinales, Labor S. A., Barcelona, S. 741–744
110. Schneller P (1953) Hippokrates 24:476–478 [PubMed]
111. Moldenschardt H (1954) Med Monatsschr 8:402–403 [PubMed]
112. Scheller EF (1955) Med Klin 8: 327–329
113. Luibl E (1958) Med Monatsschr 12:181–182 [PubMed]
114. Fr Demand Pat Doc No 2507477
115. Jeuring HJ, Verwaal W, Brands A, VanEde K, Dornseiffen JW (1982) Z Lebensm Unters Forsch 175:85–87
116. Dreon DM (1990) J Am Med Assoc 263:2.462, zit. nach NN (1990) Dtsch Apoth Ztg 130:2.543
117. Mata P, Garrido JA, Ordovas JM, Blazquez E, Alvarez-Sala LA, Rubio MJ, Alonso R, de Oya M (1992) Am J Clin Nutr 56:77–83 [PubMed]
118. Ng TKW, Hayes KC, DeWitt GF, Jegathesan M, Satunasingam N, Ong ASH, Tan D (1992) J Am Coll Nutr 11:383–390 [PubMed]
119. Mori T, Vandongen R, Mahanian F, Douglas A (1992) Metab Clin Exp 41:1.059–1.067
120. Bosaeus I, Belfrage L, Lindgren C, Andersson H (1992) Eur J Clin Nutr 46:111–115 [PubMed]
121. Bianco A, Lo Scalzo R, Scarpati ML (1993) Phytochemistry 32:455–457
122. Bianchi G, Vlahov G, Angglani C, Murelli C (1993) Phytochemistry 32:49–52
123. Van Joost T, Sillevis Smitt JH, van Ketel WG (1981) Contact Dermatitis 7:309–310 [PubMed]
124. De Boer EM, van Ketel WG (1984) Contact Dermatitis 11:128–129 [PubMed]
125. Jung HD, Holzegel K (1987) Dermatosen 35:131–132
126. Blanca M, Boulton P, Brostoff J (1984) Clinical Allergy 14:165–168
127. Tsimidou M, Macrae R, Wilson I (1987) Food Chem 25:227–239
128. Chimi H, Sadik A, Le Tutour B, Rahmani M (1988) Rev Fr Corps Gras 35:339–344
129. Servili M, Montedoro GF (1989) Ind Aliment 28:14–19
130. ÖAB 90
131. Helv VII
132. BPC 79
133. Joulain D (1986) Study of the fragrance given off by certain springtime flowers. In: Brunke EJ (Hrsg) Progress in Essential Oil Research, De Gruyter, Berlin, S. 57–67
134. Al-Qarawi AA, Al-Damegh MA, ElMougy SA (2002) Phytotherapy Research 16:286-287
Lizenzausgabe mit freundlicher Genehmigung des Springer Medizin Verlags GmbH, Berlin, Heidelberg, New York
Wissenschaftliche Verlagsgesellschaft Stuttgart, Birkenwaldstraße 44, 70191 Stuttgart
24.01.2013