Helianthus tuberosis

Gewinnung: Anbau und Ernte der Topinambur gehen ähnlich wie bei der Kartoffel vor sich. Da die Knollen frosthart sind, können sie bis in den Winter hinein und auch noch im Frühjahr geerntet werden. Die Knollen verlieren, bedingt durch ihre dünne Schale, schnell Wasser, so daß die Lagerung einige Schwierigkeiten bereitet. Am besten lassen sich die Knollen in feuchtem Sand aufheben. Die Ernte erfolgt bei reiner Knollennutzung je nach Bedarf über den ganzen Winter hinweg, bei Nutzung von Knollen und Kraut muß das Kraut bis Ende Juni geschnitten sein, damit bis zum Knollenansatz im August wieder genügend Assimilationsfläche ausgetrieben ist, oder man erntet das Kraut im Herbst nach der Ausbildung der Knollen [73].

Pharmakognosie & Inhaltsstoffe [-]

Ganzdroge: Aussehen. Die Knollen sind unregelmäßig rundlich, keulen- bis spindelförmig oder langgestreckt, am unteren Ende, zum verdickten Ausläuferteil hin mehr oder weniger spitz zulaufend, 2 bis 10 cm lang, 2 bis 6 cm dick, außen weißlich, gelblich bis braun, rötlich, rot bis blaurot, an den ringsum verlaufenden Rändern der Niederblätter bisweilen dunkler gefärbt, in der Achsel der kreuzweise gegenständigen Niederblattpaare sowie am oberen Ende je eine breit kegelförmige, bis 3 mm große, stets farblose Knospe, außerdem verschieden lange Wurzeln oder deren Reste. Anstelle der unteren Achselknospen finden sich bisweilen kleinere, weniger typisch gestaltete Seitenknollen [74].

Schnittdroge: Geschmack. Die rohen Knollen haben einen an rohe Haselnüsse erinnernden Geschmack. Geruch.Erdig. Aussehen. Der Querschnitt ist weißlich und läßt eine sehr schmale, kaum 1 mm breite Rinde, einen undeutlich radiärstrahligen Holzkörper sowie ein nur kleines, kaum deutlich abgesetztes, glasig erscheinendes Mark erkennen [74].

Inhaltsstoffe: 15 bis 22 % Kohlenhydrate, insbesondere Inulin, das bei der Hydrolyse 97 % Fructose und 3 % Glucose ergibt; 3 % Eiweiß; 0,5 % Fett; [63] beim Verbrennen 1 bis 2 % Asche, davon 50 % Kaliumionen, als Anionen hauptsächlich Phosphat; Vitamin A, B1, B2, C, H, D; Gerbstoffe [72]. Die Analyse der Knollen von 19 verschiedenen wilden und kultivierten Genotypen (USA) ergab bei verschiedenen Wachstumsstadien folgende Ergebnisse: Wasser: 52 bis 72%; Proteine: 7,65 bis 10,40%; Calcium: 0,31 bis 0,45%; Magnesium: 0,10 bis 0,12%; Phosphate: 0,27 bis 0,33%; Kalium: 1,69 bis 2,22%; Natrium: 0,13 bis 0,15%; Eisen: 25 bis 36 μg/g; Mangan: 100 bis 139 μg/g; Zink: 32 bis 45 μg/g [97]. Diterpensäuren: 0,60 % Kauran-Derivate, 0,33 % Labdan-Derivat; 0,05 % des Sesquiterpenkohlenwasserstoffs β-Bisabolen [65] sowie ätherisches Öl [66].

Labdan-Derivat aus H. tuberosus

Die Knollen enthalten 1,7% Lipide (davon 49,6% neutrale Lipide, 43,1% Glycolipide und 7,3% Phospholipide). Das Verhältnis von ungesättigten zu gesättigten Fettsäuren beträgt hierbei 67,6:32,4 [101].

Lagerung, Stabilität, Verwendung, u. a. [-]

Lagerung: Der Gehalt an Kohlenhydraten wird bei einer Lagerung der Knollen bei 4 °C in einem Zeitraum von 7 Wochen nur wenig beeinflusst. Zwischen der 7. und 13. Woche betrug der Verlust bei der o.g. Kaltlagerung bei zwei untersuchten Sorten 16,7% bzw. 19,1% der Ausgangswerte [93]. Vgl. auch [95].

Verwendung: In der Nachkriegszeit zur menschlichen Ernährung [63]. In der Lebensmittelindustrie zur Gewinnung von Inulin und zur Herstellung von Oligofructose (2-10, durchschnittlich 5 Monosaccharidbausteine) durch enzymatischen Abbau von Inulin mittels Endoinulinase. Inulin oder Oligofructose sind die Ausgangsstoffe für die Herstellung von Fructose mittels enzymatischer Hydrolyse (Exoinulinase) [102]. Zur Verhinderung der Kristallisation des Zuckers in der Süßwarenindustrie. Topinambur gibt für Brennereizwecke eine rasch vergärbare Maische mit einer guten Alkoholausbeute. Knollen und Kraut weiterhin als wertvolle Futtermittel [73].

Pharmakologie [-]

Wirkungen: Inulin und Oligofructose gelangen nach dem Verzehr offensichtlich fast unverändert aus dem Gastrointestinaltrakt in den Dickdarm. In vivo Studien an Ratten und am Menschen deuten darauf hin, dass deren Hydrolyse im sauren Milieu des Magens fast zu vernachlässigen ist. Verdauungsenzyme sind nicht in der Lage die β-glykosidischen Fructose-Fructose-Bindungen zu spalten. Bifidobakterien des Colon sind dann in der Lage, Inulin und Oligofructose zu Lactat und kurzkettigen Carbonsäuren (Acetat, Propionat, Butyrat) abzubauen. Propionat kann dann zu Methylmalonyl-CoA und Succinyl-CoA verwertet werden. Beide Verbindungen hemmen die Pyruvatcarboxylase und damit die Gluconeogenese [102]. Dieser Mechanismus wird in Zusammenhang mit der durch Inulin bewirkten Erniedrigung des Blutglucosespiegels beim Menschen [103, 104] als auch mit der durch Oligofructose induzierten Reduktion der postprandialen Glykämie und Insulinämie in der Ratte [105] diskutiert [102]. Weiterhin hemmt Propionat die Hydroxymethylglutaryl-CoA-Reduktase und damit die Bildung vom Mevalonat innerhalb der Cholesterolsynthese [102]. Dieser Mechanismus wird für die Ergebnissen der nach dem Verzehr von Fructanen bewirkten Senkung von Gesamt- und LDL-Cholesterol-Spiegeln bei nicht-insulinpflichtige Diabetikern, nicht jedoch bei gesunden Probanden [104, 106] sowie für die bei Ratten nach Fütterung von Inulin bewirkten Senkung des Gesamt-Cholesterol-Spiegels [107] postuliert [102]. Weiterhin wird durch Fructane das Wachstum der Population der Bifidobakterien im Dickdarm des Menschen [108, 109, 110] und der Ratte [111] stimuliert. Weitere Effekte von Bifidobakterien hinsichtlich einer Immunmodulation, der Produktion von B-Vitaminen und Folsäure, der Reduktion des Ammonium-Spiegels im Blut, des Schutzes der intestinalen Bakterienflora während der Behandlung mit Antibiotika und der Hemmung des Wachstums von pathogenen Mikroorganismen werden angenommen. Vgl. hierzu Übersicht [102].

Unerwünschte Wirkungen [-]

Meteorismus und Flatulenz sind möglich. Nach Einnahme größerer Mengen des Topinambursaftes wurde bei Männern eine Erhöhung der Serumtriglyceride (keine Angaben zum Ausmaß) beschrieben [69]. Die Menge von 40 bis 50 g Fructose täglich sollte insbesondere bei einer Hypertriglyceridämie oder einer Niereninsuffizienz nicht überschritten werden [63].

Volkstümliche Anwendungen &

andere Anwendungsgebiete

Zur Diät-Ernährung sowie bei Verstopfung.

Sonstige medizinische Anwendungen [-]

Topinambursaft, der durch Pressung der Knollen und anschließender Partialhydrolyse des darin enthaltenen Inulins gewonnen wird, dient aufgrund eines hohen Fructose-Glucose-Quotienten in Form von verdünnten Trinksäften zur diätetischen Behandlung des Diabetes mellitus. Hierbei wird die im Vergleich zur Glucose langsamere Resorption sowie die insulinunabhängige Verwertung der Fructose ausgenutzt. Die in diesen Präparaten ebenfalls vorliegenden Oligomeren können nur von Darmbakterien abgebaut werden [69].

Literatur [-]

1. Gershenzon J, Ohno N, Mabry TJ (1981) Rev Latinoamer Quim 12:53–61

2. Melek FR, Ahmed AA, Gershenzon J, Mabry TJ (1984) Phytochemistry 23:2.573–2.575

3. Herz W, Bruno M (1986) Phytochemistry 25:1.913–1.916

4. Beale MH, Bearder JR, MacMillan J, Matsuo A, Phinney BO (1983) Phytochemistry 22:875–881

5. Herz W, Kulanthaivel P, Watanabe K (1983) Phytochemistry 22:2.021–2.025

6. Herz W, Kulanthaivel P (1984) Phytochemistry 23:1.453–1.459

7. Schilling EE (1983) Biochem Syst Ecol 11:341–344

8. Schilling EE, Panero JL, Storbeck TA (1987) Biochem Syst Ecol 15:671–672

9. Gao F, Wang H, Mabry TJ (1987) J Nat Prod 50:23–29 [PubMed]

10. Spring O, Albert K, Gradmann W (1981) Phytochemistry 20:1.883–1.885

11. Spring O, Albert K, Hager A (1982) Phytochemistry 21:2.551–2.553

12. Melek FR, Gage DA, Gershenzon J, Mabry TJ (1985) Phytochemistry 24:1.537–1.539

13. Spring O, Benz T, Ilg M (1989) Phytochemistry 28:745–749

14. Hutchison M, Gaskin P, MacMillan J, Phinney BO (1988) Phytochemistry 27:2.695–2.701

15. Pyrek JS (1984) J Nat Prod 47:822–827

16. Ferguson G, McCrindle R, Murphy ST, Parvez M (1982) J Chem Res Synop 200–201

17. Martin Panizo F, Rodriguez B (1979) An Quim 75:428–430, zit. nach CA 91:120388

18. Pyrek JS (1979) Pol J Chem 53:1.071–1.072

19. Pyrek JS (1979) Pol J Chem 53:2.465–2.475

20. Tchirva WJA, Tcheban PL, Lasurjevski GW (1968) Khim Prir Soedin 140, zit. nach CA 69:41746

21. Tcheban PL, Tchirva WJA, Lasurjevski GW (1969) Khim Prir Soedin 59

22. Tcheban PL, Tchirva WJA, Lasurjevski GW (1969) Khim Prir Soedin 129–130, zit. nach CA 71:70889

23. Tcheban PL, Tchirva WJA (1969) Khim Prir Soedin 327, zit. nach CA 73:45777

24. Wojciechowski Z, Anysz-Loos L, Szybek P, Ukrainska H, Kasprzyk Z (1971) Bull Acad Pol Sci, Ser Sci Biol 19:179–182

25. Wojciechowski Z, Kasprzyk Z (1972) Bull Acad Pol Sci, Ser Sci Biol 20:87–89, zit. nach CA 76:154087

26. Bader G, Wagner K, Hiller K (1990) Planta Med 56:553–554

27. Bader G, Zieschang M, Wagner K, Gründemann E, Hiller K (1991) Planta Med 57:471–474 [PubMed]

28. Egger K (1968) Z Naturforsch 23b:733–735

29. Toth G, Szabolcs J (1981) Phytochemistry 20:2.411–2.4115

30. Deli J, Molnar P, Toth G, Szabolcs J, Radics L (1988) Phytochemistry 27:547–549

31. Homberg EE, Schiller HPK (1973) Phytochemistry 12:1.767–1.773

32. Matsumoto T, Nakagawa M, Itoh T (1984) Phytochemistry 23:921–923

33. Huesa Lope J, Carabello-Infante Perales P, Mazuelos Vela F (1974) Grasas Aceites 25:350–353, zit. nach CA 82:135733

34. Rzhekin VP, Krasilnikov VN, Karaseva TV, Nedachina NA, Gorshkova EI (1968) Maslozhir Prom 34:13–16, zit. nach CA 69:68476

35. Popov A, Dodova-Anghelova M, Ivanov CH, Stefanov K (1970) Riv Ital Sostanze Grasse 47:254–256, zit. nach CA 73:78792

36. Schwenke KD, Pähtz W, Linow KJ, Raab B, Schultz M (1979) Nahrung 23:241–254

37. This P, Goffner D, Raynal M, Chartier Y, Delseny M (1988) Plant Physiol Biochem 26:125–132

38. Decherf-Hamey S, Mimouni B, Raymond J, Azanza JL (1990) Nahrung 34:387–398

39. Pomenta JV, Burns EE (1971) J Food Sci 36:490–493

40. Leung J, Fenton TW, Claudinin DR (1981) J Food Sci 46:1.386–1.393

41. Harborne JB, Smith DM (1978) Biochem Syst Ecol 6:287–291

42. Riesenberg LH, Soltis DE, Arnold D (1987) Amer J Bot 74:224–233

43. Gemishev TM (1966–1967) God Sofii Univ Biol Fak 61:185–197, zit. nach CA 73:127714

44. Bohlmann F, Arndt C, Bornowski H, Jastrow H, Kleine KM (1962) Chem Ber 95:1.320–1.327

45. Etievant PX, Azar M, Pham-Delegue MH, Masson CJ (1984) J Agric Food Chem 32:503–509

46. Luedtke M (1961) Z Pflanzenzue 45:406–420

47. Berger F (1949–1952) Handbuch der Drogenkunde, Verlag für medizinische Wissenschaften Wilhelm Maudrich, Wien, Bd. 1, S. 305; Bd. 2, S. 158; Bd. 3, S. 282

48. Müller-Dietz H, Kraus EM, Rintelen K (1965) Arzneipflanzen in der Sowjetunion, Berlin, S. 116

49. Kiritkar KR, Basu BD, An ICS (1988) Indian Medicinal Plants, Bd. II, International Book Distributors, Dehradun, S. 1.370–1.371

50. Pahlow M (1989) Das große Buch der Heilpflanzen, Gräfe und Unzer Verlag, München, S. 305

51. Erdmann H (1930) Muench Med Wochenschr 77:1.127

52. Valnet J (1983) Phytotherapie – Traitment des maladies par les plantes, Maloine S. A., Paris, S. 442

53. Sörensen JS, Sörensen NA (1954) Acta Chem Scand 8:284–291

54. Cecchini T (1990) Enciclopedia de las hierbas y de las plantas medicinales, Editorial de Vecchi S. A., Barcelona, S. 211–212

55. Spring O, Kupka J, Maier B, Hager A (1981) Z Naturforsch 37C:1.087–1.091

56. Hausen BM (1988) Allergiepflanzen, Pflanzenallergene, Kontaktallergene, Ecomed, Landsberg, S. 144–146

57. Hausen BM, Spring O (1989) Contact Dermatitis 20:326–334 [PubMed]

58. Shustanova LA, Umarov AU, Markman AL (1971) Khim Prir Soedin 3–7, zit. nach CA 74:108155

59. Schwarz FKT (1944) Hippokrates 15:33–34

60. Hopkins GJ, Kennedy TG, Carrol KK (1981) J Natl Cancer Inst 66:517–522 [PubMed]

61. Beems RB, van Beek L (1984) Carcinogenesis 5:413–417 [PubMed]

62. BAz Nr. 22a vom 03.02.1988

63. Laube H (1988) Dtsch Med Wochenschr 113:1.534

64. Spring O (1991) Phytochemistry 30:519–522

65. Bohlmann F, Jakupovic J, King RM, Robinson H (1980) Phytochemistry 19:863–868

66. MacLeod AJ, Pieris NM, Gonzales de Troconis N (1982) Phytochemistry 21:1.647–1.651

67. Inge-Vechtomova NI (1971) Vstn Leningrad Univ Biol 113–117, zit. nach CA 76:110312

68. Schilling EE, Mabry TJ (1981) Biochem Syst Ecol 9:161–163

69. Angeli I, Bärwald G (1985) Gordian 11:239–244

70. BAz Nr. 199a vom 20.10.1989

71. Heg, Bd. VI, Teil 3, S. 244–257

72. Hgn, Bd. III, S. 345, 483–495, 521–537; Bd. VII, S. 107, 150; Bd. VIII, S. 265–314

73. Hag, Bd. 5, S. 29–34

74. HAB 1

75. DAC 86

76. Mar 29

77. Alfatafta AA, Mullin CA (1992) Phytochem 31:4109-4113

78. Cabello-Hurtado F, Durst F, Jorrin JV, Werck-Reichhart D (1998) Phytochem 49:1029-1036

79. Ukiya M, Akihisa T, Tokuda H, Koike K, Takayasu J, Okuda H, Kimura Y, Nakaido T, Nishino H (2003) J Agric Food Chem 51:2949-2957 [PubMed]

80. Akihisa T, Yasukawa K, Oinuma H, Kasahara Y, Yamanouchi S, Takido M, Kumaki K, Tamura T (1996) Phytochem 43:1255-1260 [PubMed]

81. Akihisa T, Oinuma H, Yasukawa K, Kasahara Y, Kimura Y, Takase S, Yamanouchi S, Takido M, Kumaki K, Tamura T (1996) Chem Pharm Bull 44:1255-1257

82. Ukiya M, Akihisa T, Tokuda H, Koike K, Kimura Y, Asano T, Motohashi S, Nikaido T, Nishino H (2003) J Nat Prod 66:1476-1479 [PubMed]

83. Hiegemann M, Duddeck H, Bader G, Hiller, K (1995) Magnetic Resonance in Chemistry 33:337-341

84. Rajic A, Akihisa T, Ukiya M, Yasukawa K, Sandeman RM, Chandler DS, Polya GM (2001) Planta med 67:599-604 [PubMed] [PubMed]

85. Bader G, Plohmann B, Hiller K, Franz G (1996) Pharmazie 51:414-417 [PubMed]

86. Macias FA, Varela RM, Torres A, Oliva RM, Molinillo JMG (1998) Phytochem 48:631-636

87. Duran S, Delgado J, Gamez R, Velazquez E, Gonzalez-Pol J, Serrano P, Lopez-Crespo R, Guardia P, Conde J (1997) Contact Dermatitis 37:184 [PubMed]

88. Garcia-Menaya JM, Gonzalez Galan I, Alvaro MI, Fernandez L, Rosendo R, Gonzalez.-Mateos G (2001) Allergy (Copenhagen) 56(Suppl. 68):155-156

89. Iwaya M, Murakami G, Kurose K, Matsuno M, Onoue Y, Takayanagi M, Kayahara M, Adachi Y, Adachi Y, Okada T (1994) Arerugi 43:696-700 [PubMed]

90. Kommentar zur PH. EUR. NT 1999, 12. Lfg. 1999

91. Ph. Eur. 4.0

92. Patkai G, Barta J, Kerepesi I (2001) Elelmezesi 55:346-359

93. Chekroun MB, Amzile J, Mokhtari A, El Haloui NE, Prevost J (1997) J Agronomy & Crop Science 179:129-133

94. Benchekroun M, Amzile J, El Yachioui M, El Haloui NE (1995) Belg Journ Bot 128:90-94

95. Schubert S, Feuerle R (1997) New Phytol 136:115-122

96. Schorr-Galindo, Guiraud JP (1997) Bioresource Technology 60:15-20

97. Seiler GJ (1990) Economy Botany 44:322-335

98. Cyr DR, Bewley JD (1990) Planta 182:370-374

99. Bourne Y, Zamboni V, Bare A, Peumans WJ, Van Damme EJM, Rouge P (1999) Structure 7:1473-1482[PubMed]

100. Suseelan KN, Mitra R, Pandey R, Sainis KB, Krishna TG (2002) Arch Biochem Biophys 407:241-247[PubMed]

101. Talipova M (2001) Chemistry of Natural Compounds 37:213-215

102. Kaur N, Gupta AK (2002) J Biosci 27:703-714 [PubMed]

103. Rumessen JJ, Bode S, Hamberg O, Gudman-Hoyer E (1990) Am J Clin Nutr 52:675-681 (zitiert nach [102])[PubMed] [PubMed]

104. Yamashita K, Kawai K, Itakura K (1984) Nutr Res 4:961-966 (zitiert nach [102])

105. Oku T, Tokunaga T, Hosoya (1984) J Nutr 114:1574-1581 (zitiert nach [102]) [PubMed] [PubMed]

106. Luo J, Rizkalla S, Alamovitch C, Boussairi A, Blayo A (1996) Am J Clin Nutr 63:639-645 (zitiert nach [102])

107. Fiordaliso M, Kok N, Desager JP, Goethals F, Deboyser D, Roberfroid M, Delzenne N (1995) Lipids 30:163-167 (zitiert nach [102]) [PubMed] [PubMed]

108. Roberfroid MB, Bornet F, Bouley Ch, Cummings JH (1995) Nutr Rev 53:127-130 (zitiert nach [102]) [PubMed][PubMed]

109. Gibson GR, Beatty ER, Wang X, Cummings JH (1995) Gastroenterology 108:975-982 (zitiert nach [102])[PubMed] [PubMed]

110. Gibson GR, Roberfroid MB (1995) J Nutr 125:1401-1412 (zitiert nach [102]) [PubMed] [PubMed]

111. Campbell JM, Fahey GC, Wolf BW (1997) J Nutr 127:130-136 (zitiert nach [102]) [PubMed] [PubMed]

Copyright

Lizenzausgabe mit freundlicher Genehmigung des Springer Medizin Verlags GmbH, Berlin, Heidelberg, New York

Wissenschaftliche Verlagsgesellschaft Stuttgart, Birkenwaldstraße 44, 70191 Stuttgart

Datenstand

24.01.2013

Page updated

Google Sites

Report abuse