Proyectos de estudiantes

Los siguientes son primers diseñados por estudiantes

PRIMERS

TP53-fwd

TGT GAA GCA GCC ATT CTT TTC

TP53-Rev

CCC ATT TAC TTT GCA CAT CTC A

BRCA1F

GTG ATG AAA ACA TTC AAG CAG AAC TAG

BRCA1R

GGG ATA CAT ACT ACT GAA TGC AAA GGA

BrcaII-Fwd

AAC AGG AGA AGG GGT GAC TG

BrcaII-Rev

GCA CAT CCT GCA CAT GTA CC

PTEN-proF

GGT GCG TCC CAC TCA CAG

PTEN-proR

ATG GGG AGA AGA CGA ATA ATC C

PTEN-exF

TTG GTG TAT GCC TTC ACA TAT CTC T

PTEN-exR

GAA CAA GAT CTG AAG CTC TAC TGG A

CHEK-Fwd

GTG CCT GGC CATGTG GTT AT

CHEK-Rev

GGT GAC AGT GCAAGA CTC CG

27f

AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG

1492r

TAC GGY TAC CTT GTT ACG ACT T

PERFIL

95°C POR 5 MINUTOS

40 CICLOS 

   95°C POR 30 SEG., 

   55°C POR 30 SEGUNDOS, 

   72°C POR 1,5 MINUTOS. 

72°C POR 10 MINUTOS

ITS1 (Ribosomales para Levaduras)

TCCGTAGGTGAACCTGCGG

ITS4 (Reverse)

TCCTCCGCTTATTGATATGC

40 cycles 95°C 30 s/55°C 1 min/72°C 1.5 min 

HTTP://SITES.BIOLOGY.DUKE.EDU/FUNGI/MYCOLAB/PRIMERS.HTM 

White, T. J., T. Bruns, S. Lee, and J. W. Taylor. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. Pp. 315-322 In: PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, eds. Innis, M. A., D. H. Gelfand, J. J. Sninsky, and T. J. White. Academic Press, Inc., New York..©W

Lista de Primers Universales usados en Macrogen

1492R    TACGGYTACCTTGTTACGACTT  posición 1492-1513

27F         AGAGTTTGATCMTGGCTCAG    posición  8-27

Aprox 1500

https://scialert.net/fulltext/?doi=pjbs.2017.306.313

ITS1 (Ribosomales para Levaduras)

TCCGTAGGTGAACCTGCGG

ITS4 (Reverse)

TCCTCCGCTTATTGATATGC

40 cycles 95°C 30 s/55°C 1 min/72°C 1.5 min 

HTTPS://WWW.OMICSONLINE.ORG/A-SPECIES-SPECIFIC-PCR-BASED-ASSAY-FOR-RAPID-DETECTION-OF-MANGO-ANTHRACNOSE-PATHOGEN-COLLETOTRICHUM-GLOEOSPORIOIDES-PENZ-AND-SACC-2157-7471.1000184.PHP?AID=14947&VIEW=MOBILE

HTTP://SITES.BIOLOGY.DUKE.EDU/FUNGI/MYCOLAB/PRIMERS.HTM 

White, T. J., T. Bruns, S. Lee, and J. W. Taylor. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. Pp. 315-322 In: PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, eds. Innis, M. A., D. H. Gelfand, J. J. Sninsky, and T. J. White. Academic Press, Inc., New York..©W

EN EL PRIMER SEMESTRE DEL 2015

TOMATE 845 GPPS

1F AGGCATTCTACTGGCCAACCTTGA

1R AGCTACAAGTCCCTCTGCCCCA

TABACO 1200 HMGR

2F CAACTTTCGCTTCTCCACACATACA

2R TCACACCAACTATACAAGAGCTCCA

ECOLI 2000 DXS

3F CATACTTCAAGTTGCATGTGCTGCGG

3R AACTGGCTGAACAGTCACTCGATACC

ECOLI 740 GST

4F TGTTCAGCAACGCACTACCATACT

4R TGCCAAACCAGAACATTACTTCAGC

LEVADURA 1131 IDI

5F ATGACTGCCGACAACAATAGTATGCCC

5R CGACCATCAGTGGGAAACATTCAAGAG

LEVADURA 1000 HGM1F2-R2

6F TGTCAGTGTTGCCATTCGTG

6R CACATGGTGCTGTTGTGCTTC

LEVADURA 1131 IDI

5F ATGACTGCCGACAACAATAGTATGCCC

5R CGACCATCAGTGGGAAACATTCAAGAG

TABACO 1000 ITS

8F TGAATTGAATTGAGCGTTGG

8R TTTGGGGGATAGAGGGACTT

LEVADURA 1500 OLE

9F CTCCTGGCTCATCGAGTCTT

9R GGTGAGCATGACTGTGAAA

EN EL PRIMER SEMESTES DEL 2013

GUSTAVO DIAZ CRUZ: PLAGA DE ARROZ

B. GLUMAE      BGF 5′ ACACGGAACACCTGGGTA 3′ 

(ITS)                  BGR 5′ TCGCTCTCCCGAAGAGAT 3′

ROBLES CHAVES ALEJANDRA, CAFE

 3 LEFT PRIMER        181   21   60.88   52.38  7.00  2.00 CTCGAACACCAAGTCTTGCAC

   RIGHT PRIMER       422   20   61.05   50.00  3.00  2.00 AGCATCACGGGCAACTAATG

   PRODUCT SIZE: 242, PAIR ANY COMPL: 4.00, PAIR 3' COMPL: 2.00

KENDALL ARAYA RAMOS CITOCROMO C OXIDASA I (COI) DE TIBURONES

VF2_T1

TCA ACC AAC CAC AAA GAC ATT GGC AC

FISHR2_T1

ACT TCA GGG TGA CCG AAG AAT CAG AA

CHAVES SOLANO NEFERTITI, PRESENCIA DEL GEN COL2A1 EN UN CULTIVO IN VITRO DE CONDROCITOS DE CARTÍLAGO ARTICULAR

LEFT PRIMER     78   20   60.47   60.00  4.00  0.00 CTTAGGCCCGAGAGAGAAGG

RIGHT PRIMER   281   20   60.30   55.00  5.00  1.00 CACTCAGGGTGGCAGAGTTT

SEQUENCE SIZE: 289

INCLUDED REGION SIZE: 289

SEGUNDO JUEGO DE PRIMERS

GAAACTCTGCCACCCTGAGT

CCACCATTGATGGTTTCTCC  PRODUCTO DE 664

OLMAN MADRIGAL Y MARYCRUZ ALVAREZ VEGA

>FWD (GENERAL)

ACACGGTCCAGACTCCTACG

>RVS (PSEUDOMONA)

CCGGTGCTTATTCTGTTGGT

180BP ™ 55

>RVS (SALMONELLA Y ENTEROBACTERIAS)

ACGTCAATTGCTGCGGTTAT

159BP ™ 58

>RVS (E.COLI Y SHIGELLA)

AACGTCAATGAGCAAAGGTA

160BP TM: 53

>RVS (STAPH)

ATTAGGTACCGTCAAGATGTGC

167 ™ 56 

EN EL PRIMER SEMESTRE DEL 2012

PAOLA FUENTTES

>CEL-TRICOD

ACGACGCAAACTACAACTCG

>CEL-TRICOR

CAGGACGAGATGGTGTCG

FABIOLA ALFARO, ANDREA ULLOA, IVONNE CORTÉS Y STEPHANIE CHAVES

>QUIT-TRICOD

GACATCGACTGGGARTACCC

>QUIT-TRICOR

GCATCATCRGTGTTGAAGGG

KEVIN ANDRÉS MATA BRENES, ADRIANA CAMPOS BARAHONA, WENDY BRYAN QUIROS, NICOLE DUARTE BOJORGE

>UNCA-STD

GGATAAACGACACAACAGGAAGA

>UNCA-STR

GCACCATVATGCTCTTGAAC

CASTRO, C; GUTIÉRREZ, E; RODRÍGUEZ, A. Y VEGA, O.

>UNCABETA-D

ATCATGGCCACGGATATTGCCTGG

>UNCABETA-R

CAGCTGCATGGGCCAGCAGC

DANIELA NÚÑEZ LEITÓN, MARIELA RODRÍGUEZ RAMÍREZ, ESTEFANÍA VINCENTI MARTÍNEZ

>UNCARIBUL-D

 ATCTGGTGGGCAATCTGAAG

>UNCARIBUL-R

TTCGCCCTGATAAGCAAAGT

 

WILLIAM WATSON

>HOMOS-D

GGAGGTGGTAATGTGGTTGG

>HOMS-R

AACAGGGTGGAAAGCAAAGA

EN EL PRIMER SEMESTRE DEL 2010

1. Grupo 1. Mary Cruz Álvarez Vega 200834473, Esteve Mesen Porras 200846149, Marlen Murillo Rojas 200868951, Jose Valverde Moya 200837605

Estudio del gen que codifica para una endo-ß-mananasa en la especie Vaccinum corymbosum (Arándano)

ARMD    5’ TGGCTAGAACTTGGGCTTTC 3’

ARMR    5’ GCCAGAACAAGCCACCAG 3’

2. Grupo 2. David García, Marcelo Solano y Ana Lisa Valenciano, Crisantemos 

CRID    5’CACGAGAAATGGCTTGCTCT 3’

CRIR:   5’CCAATGACTTCATGTTCTTTTT 3’

3. Grupo 3.  Milenna González Hernández, Kaleb Martínez Arce, Daniel Ávila Quirós, Kendall Araya Ramos, Noelia Quesada Brenes. Secuencias Ribosomales de Azotobacter.

AzoUp (AAGGTCTTCGGATTGTAAAGCA) 

AzoDown (CAACCCTTTGTACCGACCAT) Producto final de 845 pb 

AZOL    5’ GGTGAATACCCAAGCGTCT 3’

AZOR    5’ CTTAGAGTGCCCGACCGAAT 3’ Producto de 693 pb

4. María Gabriela Moraga, Miguel Piedra, Ridgely Vaglio y Adriana Vargas.

Secuencias Ribosomales de Higo

FICD    5’TGAATTGAATTGAGCGTTGG 3’

FICR    5’TTTGGGGGATAGAGGGACTT 3’

5. Grupo 5. Chaves, María.,  Cruz, Jose., Díaz, Gustavo., Ruiz, Nazareth. Gen 76G2 de Stevia rebaudiana codificante de la enzima UDP-glicosiltransferasa

ST-D    5’ CGCAATCTGTTGCTGACAGT 3’

ST-R    5’ CAACCAACCCACGAGCTATT 3’