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Penn State Research Experience
English Version
My research has mainly focused on working directly with monogenean parasites collected from fish gills. As part of this process, I examined the gill tissue of the fish Caranx hippos using a stereoscope and carefully searched for individual parasites attached to the gill lamellae. Because they are very small and can sometimes be confused with the gill structures, I had to observe them closely and take my time separating them without damaging their integrity. Once located, I extracted each parasite using fine dissection tools and ensured that the specimen remained intact.
After collecting them, I preserved the parasites in DMSO for subsequent molecular analysis. I labeled and organized each sample according to the host and the collection details. I also photographed the specimens using a compound microscope to document their morphology. In these images, I focused on capturing differences in body shape and attachment structures, since part of our objective is to compare individuals collected from the same fish and determine whether these visible differences are significant.
Up to this point, the work has consisted of collection, preservation, and morphological documentation. We are currently preparing to begin the molecular phase. The next steps will involve extracting the haptor from each specimen to preserve it as a morphological reference and then performing DNA extraction. Afterwards, we will amplify the 28S rDNA region using PCR. This will allow us to compare the genetic data among the specimens and determine whether the observed morphological differences correspond with genetic variation.
Mentor: Dr. Joshua D. Lambert y Soomee Hwang Soomee Hwang
Spanish Version
Spanish Version
Mi investigación se ha centrado principalmente en trabajar directamente con parásitos monogeneos recolectados de branquias de peces. Como parte de este proceso, examiné el tejido branquial del pez Caranx hippos con un estereoscopio y busqué cuidadosamente parásitos individuales adheridos a las lamela. Dado que son pequeños y a veces se confunden con las estructuras branquiales, tuve que observarlos con atención y tomarme mi tiempo para separarlos sin dañar su integridad. Una vez encontrados, extraje cada parásito con herramientas de disección finas y me aseguré de que el espécimen permaneciera intacto.
Luego de recolectarlos, conservé los parásitos en DMSO para su posterior análisis molecular. Etiqueté y organicé cada muestra según el hospedador y los detalles de la recolección. También tomé fotografías de los especímenes con un microscopio compuesto para documentar su morfología. En estas imágenes, me centré en capturar las diferencias en la forma corporal y las estructuras de fijación, ya que parte de nuestro objetivo es comparar individuos recolectados del mismo pez y determinar si esas diferencias visibles son significativas.
Hasta este punto, el trabajo realizado ha consistido en la recolección, la preservación y la documentación morfológica. Actualmente nos estamos preparando para comenzar la fase molecular. Los siguientes pasos implicarán la extracción del haptor de cada espécimen para preservarlo como referencia morfológica y luego realizar la extracción de ADN. Posteriormente, amplificaremos la región 28S del ADNr mediante PCR. Esto nos permitirá comparar los datos genéticos entre los especímenes y comprobar si las diferencias morfológicas observadas coinciden con la variación genética.
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