分類:#細菌(bacteria)、原生生物(protoza)
藻類(algae)、病毒(virus)
真菌(fungi) ⊇ 酵母(yeast)、黴菌(molds)
細胞結構:真核、原核
生存環境:通常極為極端 Ex:深海、熱泉、南北極
發現史: 17世紀↼— (自然發生說) —⇀1895
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發酵食品 雷文霍克 巴斯德
⇨自製顯微鏡 ⇨生物發生說
⇨發現酒、酵母菌的關聯
⇨巴斯德滅菌法:100℃以下消滅微生物,主要用在消毒酒、牛奶、果汁
#細菌(bacteria):
形狀:球(單球、雙球、鏈球菌)、桿(長、短)、螺旋
有些具有莢膜可以抗拒吞噬及黏附於寄主細胞
鞭毛:周鞭毛、端鞭毛、多鞭毛、單鞭毛等
順時針旋轉:細菌向前游動
逆時針旋轉:細菌滾動
plate
上方蓋子可讓空氣流通,同時防止雜質掉入培養基
broth
液體
slant
微生物種植於斜面上
deep
適用於厭氧菌
將雜亂的微生物菌叢樣本分離出純種微生物,並加以培養增殖以便後續觀察研究
*通常實驗會重複多次以確保分離出菌種的純粹*
*操作微生物實驗時,必須全程於無菌操作台上進行實驗避免遭到空氣中其他細菌或黴菌孢子的汙染*
*今因未使用無菌操作台,因此實驗前以70%酒精擦拭桌面,再將酒精燈點燃*
*實驗操作在酒精燈周圍(無菌地帶),火產生熱氣往上飄,阻止雜質掉入培養基*
接種環、酒精燈、培養皿、E.coli菌落
接種環在酒精燈上燒紅後,等待冷卻(約10至15秒)
接種環輕輕沾取E.coli菌落後,以閃電型塗至培養基上
重複步驟1、2三次
將培養基倒置於37〫C的培養箱中16小時
隔天觀察結果
*燒紅的目的是要滅菌以分離出單一菌落*
分布情形:非常分散,僅一開始塗抹的線形有菌落生成,其餘區塊並無生長
形狀:不規則圓形
大小:mini
顏色白,微微偏黃
菌落數:7
三角玻璃棒、酒精燈、pipetman、培養皿、E.coli 稀釋菌液、95%酒精
pipetman吸取0.1ml的稀釋菌液,加在培養基上
三角玻璃棒浸泡於95%酒精中,取出過火殺菌,等待冷卻
以三角玻璃棒均勻塗抹菌液至培養基上 *培養基一邊旋轉,玻璃棒一邊畫圈,確保每個區域都塗到*
將三角玻璃棒過火後放回95%酒精中
培養基倒置於37〫C的培養箱中16小時
隔天觀察結果
樣本遭受汙染
此樣本中長出三種菌叢,且沒有一個是大腸桿菌
推測可能是因為實驗使用的是稀釋液,大腸桿菌的濃度不足才造成大腸桿菌被汙染的細菌競爭淘汰
pipetman、培養液、E.coli 菌落
pipetman接tip輕輕沾取E.coli 菌落
離心管(內含培養液)打開,開口處過火
將tip直接退入培養液中,pipeman不伸進離心管
再次把離心管開口處過火
培養液置於37〫C的培養箱中震盪培養16小時
隔天觀察結果
相較於未加入菌液的樣本,經過處裡的樣本明顯較為混濁
右圖中上面為未加入菌夜的原液,下面為加入菌液的樣本
測試紫外光是否能殺菌
E.coli 稀釋菌液、培養皿*2、酒精燈、三角玻璃棒
取100µl的大腸桿菌稀釋液並使用三角玻棒均勻塗抹於培養基中
重複前述製做兩個相同的樣本
將兩個樣本至於陽光下,打開培養皿的蓋子,分別放置5分鐘與20分鐘
時間到後,將培養皿倒置於37〫C的培養箱中16小時
隔天觀察並記錄菌落分布
因為開蓋照射陽光的緣故,樣本全數遭到空氣中細菌的汙染
沒有一個培養基中生長出的菌叢是大腸桿菌,我們放入的稀釋菌液全被三種不知名的菌類淘汰
未經UV照射
菌叢數量最多
UV照射5mins
菌叢數量有明顯減少
UV照射20mins
菌叢數量最少
從上述的實驗結果,雖然被汙染,仍可看出陽光照射時數和菌叢的生長樹兩有一定的關聯性
測試各物質對細菌的抑菌效果(抑菌圈大小)
E.coli 菌液、培養皿*1、酒精燈、鑷子、三角玻璃棒、圓形紙錠*4、Amp紙錠、無菌水、蒜頭萃取液、70%酒精、10%漂白水
pipetman取100µl的大腸桿菌原液至於培養基中
將三角玻璃棒從95%酒精中取出過火,等待冷卻
以三角玻璃棒均勻塗抹菌液至培養基上 *培養基一邊旋轉,玻璃棒一邊畫圈,確保每個區域都塗到*
鑷子過火後冷卻,用鑷子夾取Amp紙錠放置於培養皿中
再將鑷子過火後冷卻,夾取圓形紙錠放置於培養皿中
重複步驟5,直到四個紙錠皆放好 *五個紙錠等距放置,不可以太靠近邊緣*
以pipetman分別加入無菌水、蒜頭萃取液、70%酒精、10%漂白水各10μl
培養基正置於37〫C的培養箱中16小時
隔天觀察結果
藥品名稱 抑菌圈直徑(mm)
Ampicillin(10mg/ml) 15
蒜頭萃取液 13
70%酒精 9
10%漂白水 11
無菌水 0
simple staining ( 簡單染色 ⇒ 直接染色在細菌上 )
negative staining ( 負染 ⇒ 染背景凸顯透明微生物 )
Gram staining ( 格蘭氏染色 ⇒ 分類陰性菌以及陽性菌 )
在進行簡單染色以及格蘭氏染色皆須要使用熱固定法完成前置步驟
先取5µL無菌水滴至載玻片上(可視情形增加至10µL)
用tip少量沾取培養皿上的菌種,放至無菌水中
用鑷子來回通過於酒精燈上(勿停留在特定區域過久,避免玻璃破碎),使無菌水蒸發,菌種則固定於載玻片上
使用的菌種為E.coli
先用熱固定法把菌體固定在載玻片上
使用染劑Crystal violet( 結晶紫 ) 染色60秒
染色完成以ddH2O洗去過多的染劑
染劑帶正電來觀察菌種的型態與特性
使用的菌種為E.coli
此染色方法不需熱固定
使用染劑Nigrosin( 苯胺黑 ),滴在載玻片一側
染劑帶負電無法進入菌體(大多數細菌細胞壁成負電)
酸性染色法、背景染色
將菌種置放在染劑中後,使用另一載玻片將染劑推平向另一側
使用大片蓋玻片(coverslip)蓋上觀測,觀測染劑覆蓋區域較淡的一側
使用到的菌種有E.coli以及B.subtilis(枯草桿菌)兩種
在玻片上製作三個區域
左邊的為單獨E.coli的區域;中間為兩菌種的集合區域;右邊為單獨B.subtilis的區域
格蘭氏染色菌可區分陽性菌以及陰性菌
陽性菌:細胞壁肽聚醣層厚,染劑保留在細菌體內(成藍紫色)
陰性菌:細胞壁肽聚醣層薄,染劑不易保留(成粉紅色)
染色步驟:
先將三種區域以熱固定法固定在載玻片上
接下來分為四種步驟
初染:使用的染劑為結晶紫
媒染:使用的染劑為碘液
去色:使用95%的酒精(EtOH)脫色
回染:使用的染劑為番紅
此四步驟中間過程皆需要使用ddH2O清洗,且每步驟進行的時間皆為10秒
紫色部分為經染色過後的E.coli
圖中白色部分即為E.coli,背景則為經染色過後的部分
E.coli為格蘭氏陰性菌
菌體經染色過後成紅色
藍紫色菌體為B.subtilis
紅色菌體為E.coli
菌體經染色過後成藍紫色