Paramyxovirus del salmón del Pacífico (PSPV)
Por: Shalma D. Ortiz R.
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TAXONOMÍA
TAXONOMÍA
Dominio: Riboviria
Grupo: V (Virus de ssRNA negativa)
Reino: Orthornavirae
Filo: Negarnaviricota
Clase: Monjiviricetes
Orden: Mononegavirales
Familia: Paramyxoviridae
MORFOLOGÍA
MORFOLOGÍA
Es un virus de ARN monocatenario, de forma irregular y sentido negativo (-ssRNA), de aproximadamente 125-250 nm de diámetro, con envoltura y esférico.
La nucleocápside enrollada dentro de la partícula del virus es una hélice zurda de 18 nm de diámetro y hasta 1000 nm de longitud, mientras que las nucleocápsidas no ensambladas pueden observarse cerca de la superficie de las células cultivadas infectadas.
EXPRESIÓN DE GENES
EXPRESIÓN DE GENES
Genoma del Virus
La ARN polimerasa dependiente del ARN viral se une al genoma encapsulado en la región líder, y luego transcribe secuencialmente cada uno de los genes al reconocer las señales de inicio y parada que flanquean los genes virales. Los ARNm son tapados y poliadenilados por la proteína L durante la síntesis. La mayoría expresan una proteína C por escaneo de fuga y proteínas V/W por edición del ARNm.
REPLICACIÓN
REPLICACIÓN
El virus se une a los receptores de la superficie de la célula huésped a través de las glicoproteínas HN, H o G.
Fusión con la membrana plasmática; la ribonucleocápside se libera en el citoplasma.
Transcripción secuencial, los ARNm virales son tapados y poliadenilados en el citoplasma.
La replicación comienza presumiblemente cuando hay suficiente nucleoproteína para encapsular los antigenomas y genomas neosintetizados.
La ribonucleocápside interactúa con la proteína matriz bajo la membrana plasmática y brota a través del complejo ESCRT (complejos de clasificación endosomal necesarios para el transporte), liberando el virión.
HOSPEDERO
HOSPEDERO
El huésped más común en Norteamérica es el salmón Chinook (Oncorhynchus tshawytscha) adulto de Alaska, Oregón y Washington. Se han notificado aislamientos no confirmados de otros salmónidos.
VIRULENCIA
VIRULENCIA
El virus es de baja virulencia y no está asociado a enfermedad o mortalidad.
(Meyers & Batts, 2016)
TRANSMISIÓN
TRANSMISIÓN
El modo de transmisión es horizontal por el agua o de pez a pez. Se sospecha que existe un reservorio marino para el virus.
DIAGNÓSTICO
DIAGNÓSTICO
La detección del paramyxovirus se realiza mediante el aislamiento en cultivos de líneas celulares de peces susceptibles inoculados con tejido infectado.
El virus causa un efecto citopático (CPE) caracterizado por células retraídas y células redondeadas tras un largo periodo de incubación.
Efectos citopáticos de PSPV del río Ninilchik, Alaska, en células CHSE-214 a 14 °C, que demuestran redondeo y refractilidad agrupados de células (derecha) a los 9 días después de la inoculación de material pasado previamente. Cultivo de células normales (izquierda). Contraste de fase; barra de escala = 20 µm.
(Meyers & Batts, 2016)
REFERENCIAS
REFERENCIAS
Meyers, T. R., & Batts, W. N. (2016). Paramyxoviruses of Fish. Aquaculture Virology, 259–265. doi:10.1016/b978-0-12-801573-5.00017-6
Paramyxoviridae. (2010). ViralZone. https://viralzone.expasy.org/556
Santos, G., Hernández, J., Argüello, B., Ramírez, H., Vallejos, V. y Reyes, J. (2004). Proteins of Porcine rubulavirus: Structure, function and pathological implications. Archivos de Medicina Veterinaria 36(2):119-136.
Meyers,T., Burton,T., Bentz, C., Ferguson, J., Stewart, D. y Starkey, N. (2019). Diseases of Wild and Cultured Fishes in Alaska. Alaska Department of Fish and Game.
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