Paramyxovirus del salmón del Pacífico (PSPV)

Por: Shalma D. Ortiz R.

TAXONOMÍA

Dominio: Riboviria

Grupo: V (Virus de ssRNA negativa)

Reino: Orthornavirae

Filo: Negarnaviricota

Clase: Monjiviricetes

Orden: Mononegavirales

Familia: Paramyxoviridae

MORFOLOGÍA

Es un virus de ARN monocatenario, de forma irregular y sentido negativo (-ssRNA), de aproximadamente 125-250 nm de diámetro, con envoltura y esférico.

La nucleocápside enrollada dentro de la partícula del virus es una hélice zurda de 18 nm de diámetro y hasta 1000 nm de longitud, mientras que las nucleocápsidas no ensambladas pueden observarse cerca de la superficie de las células cultivadas infectadas.

EXPRESIÓN DE GENES

Genoma del Virus

La ARN polimerasa dependiente del ARN viral se une al genoma encapsulado en la región líder, y luego transcribe secuencialmente cada uno de los genes al reconocer las señales de inicio y parada que flanquean los genes virales. Los ARNm son tapados y poliadenilados por la proteína L durante la síntesis. La mayoría expresan una proteína C por escaneo de fuga y proteínas V/W por edición del ARNm.

REPLICACIÓN

HOSPEDERO

El huésped más común en Norteamérica es el salmón Chinook (Oncorhynchus tshawytscha) adulto de Alaska, Oregón y Washington. Se han notificado aislamientos no confirmados de otros salmónidos.

VIRULENCIA

El virus es de baja virulencia y no está asociado a enfermedad o mortalidad.

(Meyers & Batts, 2016)

TRANSMISIÓN

El modo de transmisión es horizontal por el agua o de pez a pez. Se sospecha que existe un reservorio marino para el virus.

DIAGNÓSTICO

La detección del paramyxovirus se realiza mediante el aislamiento en cultivos de líneas celulares de peces susceptibles inoculados con tejido infectado.

El virus causa un efecto citopático (CPE) caracterizado por células retraídas y células redondeadas tras un largo periodo de incubación.

Efectos citopáticos de PSPV del río Ninilchik, Alaska, en células CHSE-214 a 14 °C, que demuestran redondeo y refractilidad agrupados de células (derecha) a los 9 días después de la inoculación de material pasado previamente. Cultivo de células normales (izquierda). Contraste de fase; barra de escala = 20 µm.

(Meyers & Batts, 2016)

REFERENCIAS