Desarrollo de metodologías de análisis de ARNs y vesículas extracelualres basadas en biosensores electroquímicos y ópticos.
Optimización de técnicas de separación y cuantificación de ARNs extracelulares refractarios a las metodologías de secuenciación convencionales.
La secuenciación masiva de ácidos nucleicos ha generado una revolución a la hora del estudio y cuantificación del ADN y el ARN. Sin embargo, las técnicas más utilizadas para la cuantificación de ARNs reguladores poseen numerosos y marcados sesgos a favor y en contra de ciertas secuencias. Particularmente desafiante es la medición de ARNs hipermodificados tales como los tRNA y sus fragmentos. Paradógicamente, estas especies están entre las más abundantes a nivel extracelular. Por consiguiente, necesitamos optimizar los protocolos existentes de RNA-seq y RT-qPCR para una cuantificación efectiva de estas moléculas, así como para la estimación precisa de sus niveles tanto a nivel intra como extracelular. Entendemos que el desarrollo de mejores técnicas analíticas es condición necesaria para poder entender la biología y las posibilidades diagnósticas de estas moléculas. A tales efectos, hemos desarrollado técnicas innovadoras tales como RI-SEC-seq, basada en la estabilidad extracelular relativa de distintas secuencias de ARN (manuscrito en revisión). Además, estamos trabajando en la optimización de técnicas separativas que nos permitan aislar distintos complejos de ARN y proteínas tanto de medio de cultivo celular como de suero y plasma humanos.
SUB-LÍNEAS DE TRABAJO:
-Técnicas modificadas para la secuenciación y análisis de ARNs extracelulares-Optimización de técnicas de separación de ARNs y vesículas extracelulares-Rol de las mitades de tRNA en la comunicación intercelular-Propiedades inmunológicas del ARN extracelular no vesicularPUBLICACIONES DESTACADAS:
PROYECTOS DE I+D FINANCIADOS:
2023–2027: Aplicaciones diagnósticas y terapéuticas del ARN extracelular. Proyecto CSIC – Grupos. Responsable: Juan Pablo Tosar. Co-responsable: Alfonso Cayota.2022-2024: Decodificación del ARN extracelular por sensores de la inmunidad innata. Proyecto Fondo Clemente Estable, Modalidad I (FCE_I_2021_1_166344, ANII). Responsable: Juan Pablo Tosar.2022: Método para aislar, reparar, amplificar y/o secuenciar ARNs extracelulares no vesiculares estables presentes en fluídos biológicos humanos. Apoyo al patentamiento (ANII) (PAT_X_2022_1_173651). Responsable: Juan Pablo Tosar.2021: Caracterización de nanopartículas con alta resolución: sensor de pulsos resistivos (MRPS) para potenciar la investigación básica y clínica en biofármacos, nanotecnología, virología, biología molecular y bioquímica analítica. Programa de Fortalecimiento del Equipamiento de Investigación en los Servicios de la UdelaR Fuente de financiamiento: CSIC, UdelaR. Responsable: Juan Pablo Tosar.2021-2023: Biogénesis de ARNs extracelulares y su rol en la comunicación intercelular. Proyecto CSIC I+D. Fuente de financiamiento: CSIC, UdelaR. Responsable: Juan Pablo Tosar. 2019-2021: Secreción de ARNs constitutivos de la maquinaria traduccional como mecanismo de respuesta al estrés celular. Responsable: Juan Pablo Tosar. Proyecto Fondo Clemente Estable (mod. II), ANII.Las metodologías para el estudio y cuantificación de ARNs y vesículas extracelulares (exosomas, microvesículas, etc) son costosas, trabajosas, y requieren de instrumental caro y personal especializado. En nuestro laboratorio buscamos desarrollar dispositivos capaces de medir estas moléculas de forma rápida, simple, económica y confiable, de forma de llevar el análisis basado en biopsias líquidas a otro nivel. Para lograr este objetivo, apelamos al diseño de nuevos biosensores electroquímicos debido a su alta sensibilidad y compatibilidad con la automatización. Por otro lado, el uso de biosensores ópticos basados en nanopartículas metálicas es una promisoria herramienta para el tamizaje rápido de un gran número de muestras.
EQUIPO DE TRABAJO:
Biosensores electroquímicos: Ernesto Cuevasanta, Pablo Fagúndez. Biosensores ópticos basados en nanopartículas metálicas: Pablo Fagúndez. En colaboración con el Dr. Eduardo Méndez, Facultad de Ciencias.PUBLICACIONES DESTACADAS:
Systematic process evaluation of the conjugation of proteins to gold nanoparticlesFagúndez P., Bostasini S., Tosar J.P., Méndez E.Heliyon 2021; 7, e07392PROYECTOS DE I+D FINANCIADOS:
Nuestro grupo de trabajo que transita en el eje CIN(FCien) - IPMon - H. de Clínicas ha sido reconocido y financiado por el Programa CSIC Grupos de la Udelar, para el período 2023 - 2027
Colaboramos con distintos investigadores a nivel nacional e internacional para poder realizar ciencia de calidad en un entorno multidisciplinario. Particularmente importante para nosotros es la interacción con el Laboratorio de Genómica Funcional del Institut Pasteur de Montevideo (IPMon) y el Departamento Básico de Medicina del Hospital de Clínicas (F. de Medicina, UdelaR). Este eje Facultad de Ciencias - IPMon - Hospital de Clínicas nos permite recorrer el camino desde el diseño de herramientas analíticas novedosas para el estudio de ARNs y vesículas extracelulares a su aplicación en investigación biomédica tanto a nivel básico como clínico