AMF024/23
Curso Básico de Citometría (Edición 2023)
Fechas: del 16 al 27 de octubre de 2023
Plazo límite de preiscripción: 28 de septiembre de 2023
AMF024/23
Curso Básico de Citometría (Edición 2023)
Fechas: del 16 al 27 de octubre de 2023
Plazo límite de preiscripción: 28 de septiembre de 2023
Online con:
1 Sesión Webinar en directo 16 de Octubre 16h
3 Prácticas presenciales (CIBA):
Práctica 1 (de 10h a 13h ó de 16h a 19h) : 23 de Octubre
Práctica 2 (de 12h a 14h) : 25 ó 26 de Octubre
Práctica 3 (de 15h a 19h) : 25, 26 ó 27 de Octubre
Este curso va dirigido a profesionales de Salud, y/o Investigadores del ámbito biomédico y ciencias de la salud, así como a profesionales adscritos a grupos de investigación del IIS Aragón, que precisen el manejo de este tipo de metodología para el desarrollo de su labor investigadora.
El máximo de participantes serán 18 personas. Al tratarse de un curso mixto (incluye sesione on-line y sesiones presenciales), los alumnos deben estar familiarizados con el uso de plataformas de formación a distancia, así como tener un nivel medio en el manejo de internet.
Los criterios de selección serán:
- Profesionales del SALUD que pertenezcan a un grupo de investigación.
- Profesionales del SALUD que deseen iniciar labor investigadora.
- Profesionales adscritos a grupos de investigación del IIS Aragón no incluidos en los dos grupos anteriores que desarrollen investigación clínica o básica y con preferencia de los grupos emergentes.
- Orden de Preinscripción.
En la selección, se intentará garantizar que los distintos sectores sanitarios de Aragón tengan representación en la actividad.
La citometría de flujo es una técnica de análisis celular sencilla pero muy informativa y versátil que permite estudiar desde la expresión de determinadas proteínas en la célula hasta el metabolismo o la capacidad proliferativa de la misma y todo ello de una manera rápida, estudiando múltiples células individuales y determinando diferentes parámetros de forma simultánea.
La citometría no sólo permite estudiar las células, sino que nos ofrece la posibilidad de separar las que nos interesan dentro de una mezcla de tipos celulares lo que la convierte en una técnica fundamental en los proyectos de investigación en biología celular.
La citometría se ha adaptado también a otras aplicaciones fuera del estudio celular, así, se ha desarrollado el análisis multiplex que nos permite cuantificar por citometría la concentración de proteínas en líquidos biológicos, realizar estudios de genotipado y de niveles de micro ARN entre otras aplicaciones.
Objetivos generales
Dar a conocer los fundamentos en los que se sustenta la citometría de flujo, familiarizarse con en el manejo de los equipos, presentar las diferentes aplicaciones que se derivan del mismo y conseguir que los alumnos sepan interpretar los datos que genera un citómetro de flujo.
Objetivos Específicos
El alumno al finalizar el curso deberá:
Conocer los componentes y el funcionamiento de un citómetro de flujo.
Conocer las bases teóricas de la fluorescencia y la dispersión de la luz y como se utilizan en citometría de flujo.
Saber analizar e interpretar los datos del control de calidad en un citómetro de flujo.
Conocer los fundamentos y aplicaciones del inmunofenotipado por citometría de flujo.
Saber cómo preparar las muestras para un análisis de inmunofenotipado y configurar el citómetro para realizarlo
Saber analizar e interpretar los resultados de un experimento de inmunofenotipado por citometría de flujo.
Conocer los fundamentos teóricos de las diversas aplicaciones de la citometría de flujo al estudio funcional de la célula.
Saber cómo preparar las muestras para un análisis de ciclo celular y como configurar el citómetro para realizarlo.
Saber cómo preparar las muestras para un análisis de la apoptosis celular usando Anexina V/PI y como configurar el citómetro para realizarlo
Saber analizar e interpretar los resultados de un experimento de análisis de ciclo celular por citometría de flujo.
Saber analizar e interpretar los resultados de un experimento de análisis de la apoptosis celular usando Anexina V/PI por citometría de flujo.
Saber analizar e interpretar los resultados de un experimento de análisis multiplex para calcular la concentración de proteínas
Conocer los fundamentos de los nuevos desarrollos en citometría: Citometría espectral, CyTOF Y citometría de imagen.
Javier Godino Gómez. Responsable del Servicio Científico Técnico de Separación Celular y Citometría del IACS.
César Vallejo Ruiz. Técnico de laboratorio del Servicio Científico Técnico de Separación Celular y Citometría del IACS.
Beatriz Jimeno Beltrán. Técnico de laboratorio del Servicio Científico Técnico de Separación Celular y Citometría del IACS .
Matilde Desirée Pereboom Maicas. Responsable del SAI de Citómica de la Universidad de Zaragoza.
El curso es en modalidad mixta, on line con prácticas presenciales y mediante webinar en directo.
Durante la fase asíncrona al alumno dispondrá de contenidos de varios tipos:
La actividad docente se desarrollará a partir de:
- Contenido del temario en formato multimedia y en formato “pdf” descargable.
- Presentaciones en formato digital con el contenido de cada tema.
- Actividades de autoevaluación para afianzar los contenidos.
- Foro de debate y resolución de dudas
- Aportación de casos prácticos
Se seguirá una metodología que favorezca una interacción continuada entre docente y alumno. Los docentes actuarán como guía para facilitar la transferencia de conceptos por parte de los alumnos. Para ello, los ejercicios prácticos se corregirán en un contexto interactivo, facilitando la discusión y el diálogo en lugar de la corrección unidireccional por parte del profesor. Los docentes tienen amplia experiencia en formación online, conoce la plataforma moodle y los recursos que dispone dicha plataforma
Tras una introducción teórica de los fundamentos de la citometría de flujo, componentes de un citómetro y bases de la fluorescencia y dispersión de la luz, se pasa a estudiar cada una de las posibles aplicaciones de la citometría haciendo hincapié en las más usadas de experimentos realizados previamente.
Después de una introducción teórica los alumnos se dividirán en grupos para estudiar de forma práctica las aplicaciones más importantes de la citometría de flujo, llevarán a cabo los procesos de preparación de las muestras, adquisición y analizarán los resultados,
Los alumnos dispondrán para realizar la parte práctica del curso de los 3 citómetros de la unidad de separación celular y citometría y del equipo IMAGESTREAM de la unidad de citómica de la universidad de Zaragoza.
Las 23,5 horas del curso se distribuyen en 14 horas de trabajo on-line, donde se exponen los conceptos teóricos y se proponen varios casos prácticos en la plataforma, 1,5 horas de webinar en directo, y 9 horas de prácticas presenciales, en el Centro de Investigación Biomédica, en la Unidad de separación Celular y Citometría del IACS y en el Servicio de Citómica de la Universidad de Zaragoza.
Webinar en directo (1,5 horas) (18 de octubre 16:30h* Fecha y horario por confirmar)
Módulo 1 Conceptos teóricos (11 horas) (Del 16 al 22 de Octubre)
Tema 1 Fundamentos de la citometría de flujo. Componentes de un citómetro (2 horas)
Tema 2 Inmunofenotipado celular (1,5 horas)
Tema 3 Estudio de ciclo celular y proliferación (1,5 horas)
Tema 4 Estudio de muerte celular y apoptosis. (1,5 horas)
Tema 5 Análisis del metabolismo por citometría de flujo (1,5 horas)
Tema 6 Separación celular por citometría (1,5 horas)
Tema 7 Análisis multiplex (1,5 horas)
Módulo 2 Análisis de experimentos de citometría (6 horas) (Primera y Segunda semana)
Manejo del programa de análisis KALUZA (1,5 horas)
Estudios de viabilidad celular. Apoptosis y necrosis (1,5 horas)
Inmunofenotipado (1,5 horas)
Análisis multiplex (1,5 horas)
A los alumnos se les planteará una serie de casos prácticos con preguntas que deberán contestar y que el profesorado corregirá.
Práctica 1 Sesión presencial: Sala Levi Montalcini Edificio CIBA (3 horas)
Subgrupo 1: 23 de octubre de 10h a 13h
Subgrupo 2: 23 de octubre de 16h a 19h
*Cada alumno/a debe venir con su ordenador portátil personal
Práctica 2 Componentes de un citómetro y adquisición de muestras (I) (2 horas) (Del 23 al 27 de octubre)
Sesión presencial: Servicio de Citómica de la Universidad de Zaragoza. Los alumnos se dividirán en grupos de 9.
Componentes del Citómetro ImageStream X
Análisis simultáneo por citometría y microscopia
Estudio de apoptosis por citometría.
Subgrupo 1: 25 de octubre de 12h a 14h
Subgrupo 2: 26de octubre de 12h a 14h
Practica 3 Componentes de un citómetro y adquisición de muestras (II) (4 horas) (Del 23 al 27 de octubre)
Sesión presencial: Unidad de separación Celular y Citometría del IACS. Los alumnos se dividirán en grupos de 6, en la unidad se agruparan de 2 en 2 en cada uno de los citómetros e irán rotando por los mismos.
Componentes del citómetro SONY SH800S. Inmunofenotipado de membrana y separación celular
Componentes del citómetro SONY SA3900. Citometría espectral y análisis de ciclo celular
Componentes del citómetro GALLIOS. Control de calidad en citometría.
Subgrupo 1: 25 de octubre de 15h a 19h
Subgrupo 2: 26 de octubre de 15h a 19h
Subgrupo 3: 27 de octubre de 15h a 19h
Para la obtención del certificado con la acreditación es necesario asistir a la totalidad de las actividades presenciales y leer y realizar todas las preguntas de autoevaluación y ejercicios propuestos por los docentes en cada módulo.
Actividad solicitada para su acreditación por la Comisión de Formación Continuada de la Profesiones Sanitarias de Aragón.
Javier Godino Gómez. Responsable del Servicio Científico Técnico de Separación Celular y Citometría del (IACS).
Daniel Bordonaba Bosque. Servicio de Apoyo Metodológico y Estadístico del IACS.
Tel. 976 71 58 99 Fax. 976 71 46 70
E-mail: formacion.iacs@aragon.es
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