*A programação pode sofrer alterações a qualquer momento.
**Currículo lattes dos ministrantes pode ser acessado clicando em suas fotos abaixo.
Os minicursos acontecerão do dia 09 ao dia 11 de fevereiro no período da tarde
MINISTRANTES: Beatriz Patricio
Gilberto Weissmüller
Wellington Silva
EMENTA: Nas últimas décadas, a microscopia de força atômica (AFM) transformou a maneira como observamos e estudamos materiais em nanoescala. Utilizando uma ponta extremamente fina que interage com a superfície da amostra, o AFM gera imagens detalhadas e permite explorar propriedades físicas e químicas de nanomateriais, compostos orgânicos e inorgânicos, além de amostras biológicas, como células e proteínas. Durante o minicurso, os alunos terão contato com a teoria dos conceitos básicos de AFM e, na parte prática, iremos selecionar uma ou mais amostras para caracterização, acompanhando todas as etapas do experimento.
MINISTRANTE: Mariana Simões Ferreira
EMENTA: Neste minicurso, o objetivo é explorarmos o método computacional de simulação de Dinâmica Molecular e como ele nos permite estudarmos as estruturas de biomoléculas, como as proteínas, computacionalmente. Nas partes téorica e prática serão discutidas a importância de definirmos os parâmetros biofísicos adequados para que os resultados obtidos pelas simulações sejam biologicamente confiáveis: como escolher o sistema de estudo, prepará-lo e, posteriormente, analisá-lo.
MINISTRANTE: Marcelo F. Santiago
EMENTA: : Princípios básicos de microscopia fotônica. Resolução, lentes e correções ópticas. Fontes de luz, filtros e espelhos. Microscopia de epi-fluorescência. Microscopia de luz estruturada. Componentes e funcionalidade do “hardware”. Princípio da microscopia confocal de varredura à LASER. Princípio da microscopia confocal à disco giratório. Caminho óptico, espelhos dicroicos e filtros. Preparação de amostras: corantes fluorescentes utilizados em microscopia confocal e meios de montagem. Métodos de aquisição de imagens no microscópio confocal. Geração de imagens em 2D, 3D ou 4D.
MINISTRANTES: Marlon Lemos Dias
Cibele Ferreira Pimentel
Raphaela Pires Ferreira
EMENTA: O minicurso de cultivo de células será ministrado no formato teórico-prático. Na parte teórica serão abordados os principais princípios e técnicas experimentais do cultivo celular em 2D e 3D. Na parte prática, os alunos executarão os procedimentos experimentais comumente realizados no cultivo 2D. Além disso, o cultivo 3D de esferoides também será realizado.
MINISTRANTE: Ana Carolina Couto de Oliveira
EMENTA: A citometria de fluxo é uma técnica poderosa e amplamente utilizada na pesquisa científica e na prática clínica, permitindo a análise rápida e multiparamétrica de analitos em suspensão (não apenas células!). Por meio da detecção de características físicas e da marcação com anticorpos/corantes fluorescentes, é possível identificar, quantificar e caracterizar diferentes analitos com alta precisão. Essa metodologia tem diversas aplicações, incluindo imunofenotipagem celular, análise de ciclo/morte celular, expressão e dosagem de proteínas, diagnóstico e monitoramento de doenças hematológicas, entre outras áreas da biomedicina e ciências da vida. O curso teórico-prático de citometria de fluxo foi desenvolvido para fornecer uma visão abrangente da técnica, combinando fundamentos teóricos com atividades práticas. Ao longo de três tardes, os participantes terão contato com:
Princípios básicos da citometria de fluxo (óptica, fluidos e fluorescência);
Introdução aos fluorocromos, anticorpos e controles experimentais;
Planejamento de experimentos e boas práticas em citometria;
Aquisição de dados em citômetro de fluxo;
Análise e interpretação de resultados, incluindo estratégias de gating;
Discussão de aplicações práticas e resolução de dúvidas.
MINISTRANTES: Matheus Luchetta
Moara Lemos
José de Anchieta
EMENTA: O curso aborda TEM, cryo-EM e métodos de reconstrução em três turnos. No primeiro, são apresentados princípios básicos de TEM e cryo-EM, preparação de amostras e conceitos de tomografia crioeletrônica (cryo-ET). No segundo turno, são discutidos os passos de processamento em cryo-ET: pré-processamento, alinhamento com fiduciárias e reconstrução volumétrica por WBP com métodos iterativos. No terceiro turno, é introduzida a análise de partícula única (SPA), com prática no Relion 5, apresentando o pipeline de processamento da beta-galactosidase, incluindo classificação, refinamento e validação estrutural.
MINISTRANTE: Igor Camilo Ferreira
EMENTA: Resumo:
O minicurso tem como objetivo oferecer uma introdução abrangente sobre pangenômica: o estudo da variação genômica e do conjunto completo de genes encontrados em todos os representantes de um grupo taxonômico. O curso explora a ecologia e evolução dos pangenomas, mecanismos que moldam a diversidade genética de populações procarióticas e como a fluidez e plasticidade do genoma influenciam a adaptação populacional aos mais diversos ambientes, finalizando com a exposição prática de pipelines em bioinformática para a reconstrução e análise de pangenomas bacterianos.
Ementa prevista:
Parte 1: Introdução à pangenômica:
Origem do conceito de “pangenoma”;
Histórico e fundamentos da pangenômica: do genoma de referência à era das (meta)(pan)ômicas;
Organização de pangenomas procarióticos: níveis de classificação (core, acessório, único), tamanho do pangenoma, composição e diversidade funcional;
O conceito de espécie procariótica na abordagem pangenômica;
Parte 2: Ecologia e evolução dos pangenomas:
Mecanismos evolutivos que moldam pangenomas procarióticos (transferência gênica horizontal, deriva genética, mutação e seleção);
Fluidez, plasticidade e dinâmica gênica em populações procarióticas;
Seleção gênica a nível populacional em pangenomas;
Parte 3: Aplicações da pangenômica bacteriana e pipelines em bioinformática:
Pangenômica aplicada à microbiologia médica e biotecnologia;
Perspectivas para a pesquisa em pangenômica;
Exposição: reconstruindo o pangenoma de espécies bacterianas na prática.